سال 18، شماره 6 - ( آذر - دی 1403 )
جلد 18 شماره 6 صفحات 363-352 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Anjum H, Mitu S Y, Arefin M S, Mitu M J, Hossain M S, Islam S, et al . Occurrence of Metallo-β-lactamase Variants Among Heterogeneous Population of Carbapenem Resistant Clinical from Savar, Bangladesh. Iran J Med Microbiol 2024; 18 (6) :352-363
URL: http://ijmm.ir/article-1-2462-fa.html
URL: http://ijmm.ir/article-1-2462-fa.html
انجوم حصنین، میتو شمایا یاسمیر، عارفین ام دی. شمسول، میتو مفتاهول جنت، حسین ام دی. صبیر، اسلام سلجول، و همکاران.. وقوع انواع متالو-β-لاکتاماز در میان جمعیت ناهمگن سودوموناس آئروژینوزا بالینی مقاوم به کارباپنم از سوار، بنگلادش. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1403; 18 (6) :352-363
حصنین انجوم1 
، شمایا یاسمیر میتو1 ، ام دی. شمسول عارفین1 ، مفتاهول جنت میتو1 ، ام دی. صبیر حسین2 ، سلجول اسلام1 ، ام. الف. کریم رومی3 ، ام حصیبور رحمان4
، شمایا یاسمیر میتو1 ، ام دی. شمسول عارفین1 ، مفتاهول جنت میتو1 ، ام دی. صبیر حسین2 ، سلجول اسلام1 ، ام. الف. کریم رومی3 ، ام حصیبور رحمان4
1- گروه میکروب شناسی، دانشگاه جهانگیرنگار، سوار، داکا-1342، بنگلادش
2- گروه بیوشیمی و بیولوژی مولکولی، دانشگاه جهانگیرنگار، سوار، داکا-1342، بنگلادش
3- گروه آسیب شناسی و پزشکی آزمایشگاهی، مرکز پزشکی دانشگاه کانزاس، کانزاس سیتی، KS 66160، ایالات متحده آمریکا
4- گروه میکروب شناسی، دانشگاه جهانگیرنگار، سوار، داکا-1342، بنگلادش ،hasiburku@juniv.edu
2- گروه بیوشیمی و بیولوژی مولکولی، دانشگاه جهانگیرنگار، سوار، داکا-1342، بنگلادش
3- گروه آسیب شناسی و پزشکی آزمایشگاهی، مرکز پزشکی دانشگاه کانزاس، کانزاس سیتی، KS 66160، ایالات متحده آمریکا
4- گروه میکروب شناسی، دانشگاه جهانگیرنگار، سوار، داکا-1342، بنگلادش ،
چکیده: (273 مشاهده)
زمینه و هدف: انتشار جهانی متالو-بتا-لاکتامازها (MBLs) به عنوان مکانیسم اصلی مقاومت به کارباپنم ها در ایزوله های بالینی گرم منفی از جمله سودوموناس آئروژینوزا (P. aeruginosa) گزارش شده است. مطالعه حاضر با هدف بررسی وقوع انواع MBL در ایزوله‌های P. aeruginosa مقاوم به کارباپنم از داکا، بنگلادش انجام شد.
روش‌ها: نمونه‌هایی از بیماران (۲۳۸=n) با عفونت‌های مجاری ادراری، عفونت زخم و عفونت‌های مرتبط با کاتتر از دو بیمارستان دانشگاهی سوار، داکا مورد بررسی قرار گرفت. حساسیت کارباپنم ایزوله ها در برابر ایمی پنم و مروپنم مورد آزمایش قرار گرفت. مقاومت کارباپنم با واسطه MBL به صورت فنوتیپی و از طریق تقویت PCR چهار نوع MBL مورد بررسی قرار گرفت. استخراج پلاسمید برای مشاهده ارتباط با حامل MBL انجام شد. ERIC-PCR برای تعیین ارتباط اپیدمیولوژیک احتمالی انجام شد.
یافته ها: وجود P. aeruginosa در ۲۲% (۵۳/۲۳۸) از نمونه های بالینی جمع آوری شده مشاهده شد. مقاومت به کارباپنم ها در بین ۳۰ درصد (۵۳/۱۶) از این ایزوله های بالینی وجود داشت که در مقایسه با مطالعات قبلی بیش از ۲ برابر بیشتر است. بیان فنوتیپی MBL در ۹۰ درصد (۱۴/۱۶) جدایه های مقاوم شناسایی شد. تجزیه و تحلیل مولکولی نشان داد که ۶۳٪ (۱۶/۱۰) از جدایه های مقاوم به کارباپنم حداقل یکی از انواع MBL، bla-VIM یا bla-NDM-۱ را حمل می کردند. همه انواع مثبت bla-NDM-۱ دارای پلاسمید ۰.۵ MDa بودند. ERIC-PCR ماهیت بسیار ناهمگن جدایه های P. aeruginosa را نشان داد که نشان دهنده منابع متعدد عفونت در بیمارستان است.
نتیجه‌گیری: این یافته‌ها نشان‌دهنده افزایش مقاومت با واسطه MBL به کارباپنم در P. aeruginosa است که تهدیدی جدی برای درمان عفونت‌ها در بیماران بستری در بیمارستان است.
روش‌ها: نمونه‌هایی از بیماران (۲۳۸=n) با عفونت‌های مجاری ادراری، عفونت زخم و عفونت‌های مرتبط با کاتتر از دو بیمارستان دانشگاهی سوار، داکا مورد بررسی قرار گرفت. حساسیت کارباپنم ایزوله ها در برابر ایمی پنم و مروپنم مورد آزمایش قرار گرفت. مقاومت کارباپنم با واسطه MBL به صورت فنوتیپی و از طریق تقویت PCR چهار نوع MBL مورد بررسی قرار گرفت. استخراج پلاسمید برای مشاهده ارتباط با حامل MBL انجام شد. ERIC-PCR برای تعیین ارتباط اپیدمیولوژیک احتمالی انجام شد.
یافته ها: وجود P. aeruginosa در ۲۲% (۵۳/۲۳۸) از نمونه های بالینی جمع آوری شده مشاهده شد. مقاومت به کارباپنم ها در بین ۳۰ درصد (۵۳/۱۶) از این ایزوله های بالینی وجود داشت که در مقایسه با مطالعات قبلی بیش از ۲ برابر بیشتر است. بیان فنوتیپی MBL در ۹۰ درصد (۱۴/۱۶) جدایه های مقاوم شناسایی شد. تجزیه و تحلیل مولکولی نشان داد که ۶۳٪ (۱۶/۱۰) از جدایه های مقاوم به کارباپنم حداقل یکی از انواع MBL، bla-VIM یا bla-NDM-۱ را حمل می کردند. همه انواع مثبت bla-NDM-۱ دارای پلاسمید ۰.۵ MDa بودند. ERIC-PCR ماهیت بسیار ناهمگن جدایه های P. aeruginosa را نشان داد که نشان دهنده منابع متعدد عفونت در بیمارستان است.
نتیجه‌گیری: این یافته‌ها نشان‌دهنده افزایش مقاومت با واسطه MBL به کارباپنم در P. aeruginosa است که تهدیدی جدی برای درمان عفونت‌ها در بیماران بستری در بیمارستان است.
واژه‌های کلیدی: مقاومت به کارباپنم، واریانت‌های ژنتیکی، متالو بتالاکتاماز، عفونت بیمارستانی، سودوموناس آئروژینوزا
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
مقاومت پادزیستی (آنتی بیوتیکی)
دریافت: 1403/5/11 | پذیرش: 1403/10/11 | انتشار الکترونیک: 1403/11/10
دریافت: 1403/5/11 | پذیرش: 1403/10/11 | انتشار الکترونیک: 1403/11/10
فهرست منابع
1. Kollef MH, Shorr A, Tabak YP, Gupta V, Liu LZ, Johannes RS. Epidemiology and outcomes of health-care-associated pneumonia: results from a large US database of culture-positive pneumonia. Chest. 2005;128(6):3854-62. [DOI:10.1378/chest.128.6.3854] [PMID]
2. Boucher HW, Talbot GH, Bradley JS, Edwards JE, Gilbert D, Rice LB, et al. Bad bugs, no drugs: no ESKAPE! An update from the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 2009;48(1):1-12. [DOI:10.1086/595011] [PMID]
3. Rice LB. Progress and challenges in implementing the research on ESKAPE pathogens. Infect Control Hosp Epidemiol. 2010;31(Suppl 1):S7-10. [DOI:10.1086/655995] [PMID]
4. Mancuso G, Midiri A, Gerace E, Biondo C. Bacterial Antibiotic Resistance: The Most Critical Pathogens. Pathogens. 2021;10(10):1310. [DOI:10.3390/pathogens10101310] [PMID] [PMCID]
5. Mittal R, Aggarwal S, Sharma S, Chhibber S, Harjai K. Urinary tract infections caused by Pseudomonas aeruginosa: a minireview. J Infect Public Health. 2009;2(3):101-11. [DOI:10.1016/j.jiph.2009.08.003] [PMID]
6. Ahmed I, Rabbi MB, Sultana S. Antibiotic resistance in Bangladesh: A systematic review. Int J Infect Dis. 2019;80:54-61. [DOI:10.1016/j.ijid.2018.12.017] [PMID]
7. Lodise TP, Bassetti M, Ferrer R, Naas T, Niki Y, Paterson DL, et al. All-cause mortality rates in adults with carbapenem-resistant Gram-negative bacterial infections: a comprehensive review of pathogen-focused, prospective, randomized, interventional clinical studies. Expert Rev Anti Infect Ther. 2022;20(5):707-19. [DOI:10.1080/14787210.2022.2020099] [PMID]
8. Beig M, Taheri M, Arabestani MR. Expression of MexAB-OprM efflux pump and OprD porin in carbapenemase producing Pseudomonas aeruginosa clinical isolates. Gene Reports. 2020;20:100744. [DOI:10.1016/j.genrep.2020.100744]
9. Rostami S, Farajzadeh Sheikh A, Shoja S, Farahani A, Tabatabaiefar MA, Jolodar A, et al. Investigating of four main carbapenem-resistance mechanisms in high-level carbapenem resistant Pseudomonas aeruginosa isolated from burn patients. J Chin Med Assoc. 2018;81(2):127-32. [DOI:10.1016/j.jcma.2017.08.016] [PMID]
10. Deshmukh DG, Damle AS, Bajaj JK, Bhakre JB, Patwardhan NS. Metallo-β-lactamase-producing clinical isolates from patients of a tertiary care hospital. J Lab Physicians. 2011;3(2):93-7. [DOI:10.4103/0974-2727.86841] [PMID] [PMCID]
11. Emeraud C, Escaut L, Boucly A, Fortineau N, Bonnin RA, Naas T, et al. Aztreonam plus Clavulanate, Tazobactam, or Avibactam for Treatment of Infections Caused by Metallo-β-Lactamase-Producing Gram-Negative Bacteria. Antimicrob Agents Chemother. 2019;63(5):e00010-19. [DOI:10.1128/AAC.00010-19] [PMID] [PMCID]
12. Walsh TR, Toleman MA, Poirel L, Nordmann P. Metallo-beta-lactamases: the quiet before the storm?. Clin Microbiol Rev. 2005;18(2):306-25. [DOI:10.1128/CMR.18.2.306-325.2005] [PMID] [PMCID]
13. Cornaglia G, Giamarellou H, Rossolini GM. Metallo-β-lactamases: a last frontier for β-lactams?. Lancet Infect Dis. 2011;11(5):381-93. [DOI:10.1016/S1473-3099(11)70056-1] [PMID]
14. Kumarasamy KK, Toleman MA, Walsh TR, Bagaria J, Butt F, Balakrishnan R, et al. Emergence of a new antibiotic resistance mechanism in India, Pakistan, and the UK: a molecular, biological, and epidemiological study. Lancet Infect Dis. 2010;10(9):597-602. [DOI:10.1016/S1473-3099(10)70143-2] [PMID] [PMCID]
15. Bush K. The ABCD's of β-lactamase nomenclature. J Infect Chemother. 2013;19(4):549-59. [DOI:10.1007/s10156-013-0640-7] [PMID]
16. Mojica MF, Bonomo RA, Fast W. B1-Metallo-β-Lactamases: Where Do We Stand?. Curr Drug Targets. 2016;17(9):1029-50. [DOI:10.2174/1389450116666151001105622] [PMID] [PMCID]
17. Queenan AM, Bush K. Carbapenemases: the versatile beta-lactamases. Clin Microbiol Rev. 2007;20(3):440-58. [DOI:10.1128/CMR.00001-07] [PMID] [PMCID]
18. Lauretti L, Riccio ML, Mazzariol A, Cornaglia G, Amicosante G, Fontana R, et al. Cloning and characterization of blaVIM, a new integron-borne metallo-beta-lactamase gene from a Pseudomonas aeruginosa clinical isolate. Antimicrob Agents Chemother. 1999;43(7):1584-90. [DOI:10.1128/AAC.43.7.1584] [PMID] [PMCID]
19. Khan AU, Maryam L, Zarrilli R. Structure, Genetics and Worldwide Spread of New Delhi Metallo-β-lactamase (NDM): a threat to public health. BMC Microbiol. 2017;17(1):101. [DOI:10.1186/s12866-017-1012-8] [PMID] [PMCID]
20. Urmi UL, Nahar S, Rana M, Sultana F, Jahan N, Hossain B, et al. Genotypic to Phenotypic Resistance Discrepancies Identified Involving β-Lactamase Genes, blaKPC, blaIMP, blaNDM-1, and blaVIM in Uropathogenic Klebsiella pneumoniae. Infect Drug Resist. 2020;13:2863-75. [DOI:10.2147/IDR.S262493] [PMID] [PMCID]
21. Gilardi GL. Characterization of Pseudomonas species isolated from clinical specimens. Appl Microbiol. 1971;21(3):414-9. [DOI:10.1128/am.21.3.414-419.1971] [PMID] [PMCID]
22. O'Hara C M. Manual and automated instrumentation for identification of Enterobacteriaceae and other aerobic gram-negative bacilli. Clin Microbiol Rev. 2005;18(1):147-62. [DOI:10.1128/CMR.18.1.147-162.2005] [PMID] [PMCID]
23. Weisburg WG, Barns SM, Pelletier DA, Lane DJ. 16S ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. J Bacteriol. 1991;173(2):697-703. [DOI:10.1128/jb.173.2.697-703.1991] [PMID] [PMCID]
24. Bauer AW, Kirby WM, Sherris JC, Turck M. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. Am J Clin Pathol. 1966;45(4):493-6. [DOI:10.1093/ajcp/45.4_ts.493] [PMID]
25. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. 31st ed. CLSI supplement M100. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2021.
26. Gill MM, Usman J, Kaleem F, Hassan A, Khalid A, Anjum R, et al. Frequency and antibiogram of multi-drug resistant Pseudomonas aeruginosa. J Coll Physicians Surg Pak. 2011;21(9):531-4. [PMID]
27. Magiorakos AP, Srinivasan A, Carey RB, Carmeli Y, Falagas ME, Giske CG, et al. Multidrug-resistant, extensively drug-resistant and pandrug-resistant bacteria: an international expert proposal for interim standard definitions for acquired resistance. Clin Microbiol Infect. 2012;18(3):268-81. [DOI:10.1111/j.1469-0691.2011.03570.x] [PMID]
28. Yong D, Lee K, Yum JH, Shin HB, Rossolini GM, Chong Y. Imipenem-EDTA disk method for differentiation of metallo-beta-lactamase-producing clinical isolates of Pseudomonas spp. and Acinetobacter spp. J Clin Microbiol. 2002;40(10):3798-801. [DOI:10.1128/JCM.40.10.3798-3801.2002] [PMID] [PMCID]
29. Ellington MJ, Kistler J, Livermore DM, Woodford N. Multiplex PCR for rapid detection of genes encoding acquired metallo-beta-lactamases. J Antimicrob Chemother. 2007;59(2):321-2. [DOI:10.1093/jac/dkl481] [PMID]
30. Rad ZR, Rad ZR, Goudarzi H, Goudarzi M, Alizade H, Hematian A, et al. Detection of New Delhi Metallo-β-lactamase-1 among Pseudomonas aeruginosa isolated from adult and Pediatric patients in Iranian hospitals. Gene Reports. 2021;23:101152. [DOI:10.1016/j.genrep.2021.101152]
31. Versalovic J, Koeuth T, Lupski JR. Distribution of repetitive DNA sequences in eubacteria and application to fingerprinting of bacterial genomes. Nucleic Acids Res. 1991;19(24):6823-31. [DOI:10.1093/nar/19.24.6823] [PMID] [PMCID]
32. Aljindan R, Alsamman K, Elhadi N. ERIC-PCR Genotyping of Acinetobacter baumannii Isolated from Different Clinical Specimens. Saudi J Med Med Sci. 2018;6(1):13-7. [DOI:10.4103/sjmms.sjmms_138_16] [PMID] [PMCID]
33. Ranjbar R, Tabatabaee A, Behzadi P, Kheiri R. Enterobacterial Repetitive Intergenic Consensus Polymerase Chain Reaction (ERIC-PCR) Genotyping of Escherichia coli Strains Isolated from Different Animal Stool Specimens. Iran J Pathol. 2017;12(1):25-34. [DOI:10.30699/ijp.2017.21506] [PMID] [PMCID]
34. Kado CI, Liu ST. Rapid procedure for detection and isolation of large and small plasmids. J Bacteriol. 1981;145(3):1365-73. [DOI:10.1128/jb.145.3.1365-1373.1981] [PMID] [PMCID]
35. Macrina FL, Kopecko DJ, Jones KR, Ayers DJ, McCowen SM. A multiple plasmid-containing Escherichia coli strain: convenient source of size reference plasmid molecules. Plasmid. 1978;1(3):417-20. [DOI:10.1016/0147-619X(78)90056-2] [PMID]
36. Haider K, Huq MI, Talukder KA, Ahmad QS. Electropherotyping of plasmid DNA of different serotypes of Shigella flexneri isolated in Bangladesh. Epidemiol Infect. 1989;102(3):421-8. [DOI:10.1017/S0950268800030132] [PMID] [PMCID]
37. Anjum H, Arefin MS, Jahan N, Oishee MJ, Nahar S, Islam S, et al. Roles of intrinsic and acquired resistance determinants in multidrug-resistant clinical Pseudomonas aeruginosa in Bangladesh. Bangladesh J Med Sci. 2023;22(3):489-507. [DOI:10.3329/bjms.v22i3.66960]
38. Micek ST, Wunderink RG, Kollef MH, Chen C, Rello J, Chastre J, et al. An international multicenter retrospective study of Pseudomonas aeruginosa nosocomial pneumonia: impact of multidrug resistance. Crit Care. 2015;19(1):219. [DOI:10.1186/s13054-015-0926-5] [PMID] [PMCID]
39. Palavutitotai N, Jitmuang A, Tongsai S, Kiratisin P, Angkasekwinai N. Epidemiology and risk factors of extensively drug-resistant Pseudomonas aeruginosa infections. PLoS One. 2018;13(2):e0193431. [DOI:10.1371/journal.pone.0193431] [PMID] [PMCID]
40. Wang W, Wang X. Prevalence of metallo-β-lactamase genes among Pseudomonas aeruginosa isolated from various clinical samples in China. J Lab Med. 2020;44(4):197-203. [DOI:10.1515/labmed-2019-0162]
41. Kabic J, Fortunato G, Vaz-Moreira I, Kekic D, Jovicevic M, Pesovic J, et al. Dissemination of Metallo-β-Lactamase-Producing Pseudomonas aeruginosa in Serbian Hospital Settings: Expansion of ST235 and ST654 Clones. Int J Mol Sci. 2023;24(2):1519. [DOI:10.3390/ijms24021519] [PMID] [PMCID]
42. Radhika A, Lakshmi JT, Ariyanachi K, Sakthivadivel V. Detection of Metallo Beta-Lactamase (MBL) producing pseudomonas aeruginosa in a tertiary care hospital, Ghanpur, Medchal, India. Maedica. 2022;17(1):134. [DOI:10.26574/maedica.2022.17.1.134] [PMID] [PMCID]
43. Nakayama R, Inoue-Tsuda M, Matsui H, Ito T, Hanaki H. Classification of the metallo β-lactamase subtype produced by the carbapenem-resistant Pseudomonas aeruginosa isolates in Japan. J Infect Chemother. 2022;28(2):170-5. [DOI:10.1016/j.jiac.2021.04.005] [PMID]
44. Mohanam L, Menon T. Coexistence of metallo-beta-lactamase-encoding genes in Pseudomonas aeruginosa. Indian J Med Res. 2017;146(Supplement):S46-s52. [DOI:10.4103/ijmr.IJMR_29_16] [PMID] [PMCID]
45. Saleem S, Bokhari H. Resistance profile of genetically distinct clinical Pseudomonas aeruginosa isolates from public hospitals in central Pakistan. J Infect Public Health. 2020;13(4):598-605. [DOI:10.1016/j.jiph.2019.08.019] [PMID]
46. Olaniran OB, Adeleke OE, Donia A, Shahid R, Bokhari H. Incidence and Molecular Characterization of Carbapenemase Genes in Association with Multidrug-Resistant Clinical Isolates of Pseudomonas aeruginosa from Tertiary Healthcare Facilities in Southwest Nigeria. Curr Microbiol. 2021;79(1):27. [DOI:10.1007/s00284-021-02706-3] [PMID]
47. Namaei MH, Yousefi M, Askari P, Roshanravan B, Hashemi A, Rezaei Y. High prevalence of multidrug-resistant non-fermentative Gram-negative bacilli harboring bla (IMP-1) and bla (VIM-1) metallo-beta-lactamase genes in Birjand, south-east Iran. Iran J Microbiol. 2021;13(4):470-9. [DOI:10.18502/ijm.v13i4.6971] [PMID] [PMCID]
48. Botelho J, Grosso F, Quinteira S, Brilhante M, Ramos H, Peixe L. Two decades of blaVIM-2-producing Pseudomonas aeruginosa dissemination: an interplay between mobile genetic elements and successful clones. J Antimicrob Chemother. 2018;73(4):873-82. [DOI:10.1093/jac/dkx517] [PMID]
49. Siarkou VI, Vitti D, Protonotariou E, Ikonomidis A, Sofianou D. Molecular epidemiology of outbreak-related pseudomonas aeruginosa strains carrying the novel variant blaVIM-17 metallo-beta-lactamase gene. Antimicrob Agents Chemother. 2009;53(4):1325-30. [DOI:10.1128/AAC.01230-08] [PMID] [PMCID]
50. Lombardi G, Luzzaro F, Docquier JD, Riccio ML, Perilli M, Colì A, et al. Nosocomial infections caused by multidrug-resistant isolates of pseudomonas putida producing VIM-1 metallo-beta-lactamase. J Clin Microbiol. 2002;40(11):4051-5. [DOI:10.1128/JCM.40.11.4051-4055.2002] [PMID] [PMCID]
51. Poirel L, Naas T, Nicolas D, Collet L, Bellais S, Cavallo JD, et al. Characterization of VIM-2, a carbapenem-hydrolyzing metallo-beta-lactamase and its plasmid- and integron-borne gene from a Pseudomonas aeruginosa clinical isolate in France. Antimicrob Agents Chemother. 2000;44(4):891-7. [DOI:10.1128/AAC.44.4.891-897.2000] [PMID] [PMCID]
52. Hong DJ, Bae IK, Jang IH, Jeong SH, Kang HK, Lee K. Epidemiology and characteristics of metallo-β-lactamase-producing Pseudomonas aeruginosa. Infect Chemother. 2015;47(2):81-97. [DOI:10.3947/ic.2015.47.2.81] [PMID] [PMCID]
53. Findlay J, Raro OH, Poirel L, Nordmann P. Molecular analysis of metallo-beta-lactamase-producing Pseudomonas aeruginosa in Switzerland 2022-2023. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2024 Mar;43(3):551-7. [DOI:10.1007/s10096-024-04752-8] [PMID] [PMCID]
54. Walsh TR, Weeks J, Livermore DM, Toleman MA. Dissemination of NDM-1 positive bacteria in the New Delhi environment and its implications for human health: an environmental point prevalence study. Lancet Infect Dis. 2011;11(5):355-62. [DOI:10.1016/S1473-3099(11)70059-7] [PMID]
55. Pfeifer Y, Wilharm G, Zander E, Wichelhaus TA, Göttig S, Hunfeld KP, et al. Molecular characterization of blaNDM-1 in an Acinetobacter baumannii strain isolated in Germany in 2007. J Antimicrob Chemother. 2011;66(9):1998-2001. [DOI:10.1093/jac/dkr256] [PMID]
56. Poirel L, Bonnin RA, Boulanger A, Schrenzel J, Kaase M, Nordmann P. Tn125-related acquisition of blaNDM-like genes in Acinetobacter baumannii. Antimicrob Agents Chemother. 2012;56(2):1087-9. [DOI:10.1128/AAC.05620-11] [PMID] [PMCID]
57. Carattoli A. Plasmids and the spread of resistance. Int J Med Microbiol. 2013;303(6-7):298-304. [DOI:10.1016/j.ijmm.2013.02.001] [PMID]
58. Hematzadeh A, Haghkhah M. Biotyping of isolates of Pseudomonas aeruginosa isolated from human infections by RAPD and ERIC-PCR. Heliyon. 2021;7(9):e07967. [DOI:10.1016/j.heliyon.2021.e07967] [PMID] [PMCID]
59. Stanton RA, Campbell D, McAllister GA, Breaker E, Adamczyk M, Daniels JB, et al. Whole-Genome Sequencing Reveals Diversity of Carbapenem-Resistant Pseudomonas aeruginosa Collected through CDC's Emerging Infections Program, United States, 2016-2018. Antimicrob Agents Chemother. 2022;66(9):e0049622. [DOI:10.1128/aac.00496-22] [PMID] [PMCID]
60. Aslam B, Wang W, Arshad MI, Khurshid M, Muzammil S, Rasool MH, et al. Antibiotic resistance: a rundown of a global crisis. Infect Drug Resist. 2018;11:1645-58. [DOI:10.2147/IDR.S173867] [PMID] [PMCID]
61. Saha K, Kabir ND, Islam MR, Amin MB, Hoque KI, Halder K, et al. Isolation and characterisation of carbapenem-resistant Pseudomonas aeruginosa from hospital environments in tertiary care hospitals in Dhaka, Bangladesh. J Glob Antimicrob Resist. 2022;30:31-7. [DOI:10.1016/j.jgar.2022.04.008] [PMID]
62. Zakhour J, El Ayoubi LE, Kanj SS. Metallo-beta-lactamases: Mechanisms, treatment challenges, and future prospects. Expert Rev Anti-infect Ther. 2024;22(4):189-201. [DOI:10.1080/14787210.2024.2311213] [PMID]
63. Yang Y, Yan YH, Schofield CJ, McNally A, Zong Z, Li GB. Metallo-β-lactamase-mediated antimicrobial resistance and progress in inhibitor discovery. Trends Microbiol. 2023;31(7):735-48. [DOI:10.1016/j.tim.2023.01.013] [PMID]
64. Yan YH, Li G, Li GB. Principles and current strategies targeting metallo‐β‐lactamase mediated antibacterial resistance. Med Res Rev. 2020;40(5):1558-92. [DOI:10.1002/med.21665] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
