سال 18، شماره 2 - ( فروردین - اردیبهشت 1403 )
جلد 18 شماره 2 صفحات 88-80 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Hamayeli H, Abdi-Ali A, Attaran B, Shafiei M, Modaresi M. Isolation, Identification and Antibiotic Resistance of Anaerobic Bacteria in Sputum of Cystic Fibrosis Patients from Children's Medical Center of Tehran, Iran. Iran J Med Microbiol 2024; 18 (2) :80-88
URL: http://ijmm.ir/article-1-2340-fa.html
URL: http://ijmm.ir/article-1-2340-fa.html
حمایلی هما، عبدی عالی احیا، عطاران بهاره، شفیعی مروارید، مدرسی محمدرضا. جداسازی، شناسایی و مقاومت آنتی بیوتیکی باکتری های بی هوازی در خلط بیماران فیبروز سیستیک از مرکز طبی کودکان تهران، ایران. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1403; 18 (2) :80-88
هما حمایلی1 
، احیا عبدی عالی 2، بهاره عطاران1 ، مروارید شفیعی3 ، محمدرضا مدرسی4
، احیا عبدی عالی 2، بهاره عطاران1 ، مروارید شفیعی3 ، محمدرضا مدرسی4
1- گروه میکروب شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه الزهرا، تهران، ایران
2- گروه میکروب شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه الزهرا، تهران، ایران ،abdialya@alzahra.ac.ir
3- گروه باکتری شناسی، انستیتو پاستور ایران، تهران، ایران
4- مرکز تحقیقات رشد و توسعه، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران و مرکز تحقیقات بیماری‌های ریوی و خواب‌پزشکی کودکان، مرکز آموزش عالی کودکان، مرکز طبی کودکان، تهران، ایران
2- گروه میکروب شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه الزهرا، تهران، ایران ،
3- گروه باکتری شناسی، انستیتو پاستور ایران، تهران، ایران
4- مرکز تحقیقات رشد و توسعه، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران و مرکز تحقیقات بیماری‌های ریوی و خواب‌پزشکی کودکان، مرکز آموزش عالی کودکان، مرکز طبی کودکان، تهران، ایران
چکیده: (364 مشاهده)
زمینه و اهداف: به دنبال نقص ژنتیکی در فیبروز سیستیک (CF)، تجمع موکوس و شیب هیپوکسیک در ریه ها ایجاد می شود که شرایط را برای استقرار باکتری های بی هوازی ایجاد می کند. این مطالعه به بررسی تفاوت بین شیوع برخی از باکتری های بی هوازی و مقاومت آنتی بیوتیکی در گروه های سالم و بیماران CF می پردازد.
مواد و روش کار: در این پژوهش، باکتری های بی‌هوازی در نمونه های خلط بیماران CF (۵۰ نفر) و افراد سالم (۱۸ نفر) در شهر تهران به روش کشت در سال ۱۴۰۱ مورد بررسی قرار گرفتند. نمونه ها روی بروسلا بلاد آگار (BA)، BHI آگار با ونکومایسین،LKV و BA با نئومایسین و ونکومایسین کشت داده شدند. جدایه های گرم منفی با روشهای بیوشیمیایی و جدایه های گرم مثبت با استفاده از توالییابی ۱۶s rRNA شناسایی شدند.MIC جدایه های باکتریایی برای آمپی سیلین، کلیندامایسین و آمپی سیلین/سولباکتام با استفاده از نوارهای E-test بررسی شد.
یافته ها: باکتری های بی هوازی به ترتیب در ۳۳ درصد و ۲۴ درصد از گروههای سالم و بیماران CF جداسازی شد. جدایه های شناسایی شده عبارتند از :Dialister spp. ،Fusobacterium spp. ، Lactobacillus spp. و Prevotellaspp. . جدایه های Fusobacterium از گروه سالم به آمپی سیلین حساس بودند و ۳۳ درصد از جدایه های Fusobacterium از گروه CF نسبت به این آنتی بیوتیک مقاومت نشان دادند.
نتیجه‌گیری: در این مطالعه وجود باکتری های بی هوازی در ریه افراد سالم و CF شناسایی شد. فراوانی کل این باکتری ها در گروه سالم بیشتر از گروه CF می باشد. فراوانی باکتری گرم مثبت Lactobacillus، به عنوان باکتری بالقوه مفید، در بیماران CF کمتر از افراد سالم است.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
باکتری شناسی پزشکی
دریافت: 1402/11/20 | پذیرش: 1403/2/19 | انتشار الکترونیک: 1403/3/5
دریافت: 1402/11/20 | پذیرش: 1403/2/19 | انتشار الکترونیک: 1403/3/5
فهرست منابع
1. Lu Z, Imlay JA. When anaerobes encounter oxygen: mechanisms of oxygen toxicity, tolerance and defence. Nat Rev Microbiol. 2021;19(12):774-85. [DOI:10.1038/s41579-021-00583-y] [PMID] [PMCID]
2. Chen X-F, Hou X, Xiao M, Zhang L, Cheng J-W, Zhou M-L, et al. Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Time of Flight Mass Spectrometry (MALDI-TOF MS) Analysis for the Identification of Pathogenic Microorganisms: A Review. Microorganisms. 2021;9(7):1536. [DOI:10.3390/microorganisms9071536] [PMID] [PMCID]
3. Alves J, Peres S, Gonçalves E, Mansinho K. Anaerobic Bacteria with Clinical Relevance: Morphologic and Taxonomic Classification, Distribution among Human Microbiota and Microbiologic Diagnosis. Acta Med Port. 2017;30(5):409-17. [DOI:10.20344/amp.8098] [PMID]
4. McIlvanna E, Linden GJ, Craig SG, Lundy FT, James JA. Fusobacterium nucleatum and oral cancer: a critical review. BMC Cancer. 2021;21:1212. [DOI:10.1186/s12885-021-08903-4] [PMID] [PMCID]
5. Thornton CS, Acosta N, Surette MG, Parkins MD. Exploring the Cystic Fibrosis Lung Microbiome: Making the Most of a Sticky Situation. J Pediatr Infect Dis. 2022;11(Supplement_2):S13-S22. [DOI:10.1093/jpids/piac036] [PMID] [PMCID]
6. Lambiase A, Catania MR, Rossano F. Anaerobic bacteria infection in cystic fibrosis airway disease. New Microbiol. 2010;33(3):185-94. [DOI:10.4081/mm.2011.2357]
7. Stokowa-Sołtys K, Wojtkowiak K, Jagiełło K. Fusobacterium nucleatum - Friend or foe?. J Inorg Biochem. 2021;224:111586. [DOI:10.1016/j.jinorgbio.2021.111586] [PMID]
8. Shi T, Wang J, Dong J, Hu P, Guo Q. Periodontopathogens Porphyromonas gingivalis and Fusobacterium nucleatum and their roles in the progression of respiratory diseases. Pathogens. 2023;12(9):1110. [DOI:10.3390/pathogens12091110] [PMID] [PMCID]
9. Morio F, Jean-Pierre H, Dubreuil L, Jumas-Bilak E, Calvet L, Mercier G, et al. Antimicrobial Susceptibilities and Clinical Sources of Dialister Species. J Antimicrob Agents Chemother. 2007;51(12):4498-501. [DOI:10.1128/AAC.00538-07] [PMID] [PMCID]
10. Larsen JM. The immune response to Prevotella bacteria in chronic inflammatory disease. Immunology. 2017;151(4):363-74. [DOI:10.1111/imm.12760] [PMID] [PMCID]
11. López-Causapé C, Rojo-Molinero E, Macià MD, Oliver A. The problems of antibiotic resistance in cystic fibrosis and solutions. Expert Rev Respir Med. 2015;9(1):73-88. [DOI:10.1586/17476348.2015.995640] [PMID]
12. Flynn JM, Cameron LC, Wiggen TD, Dunitz JM, Harcombe WR, Hunter RC. Disruption of Cross-Feeding Inhibits Pathogen Growth in the Sputa of Patients with Cystic Fibrosis. MSphere. 2020;5(2):10-128. [DOI:10.1128/mSphere.00343-20] [PMID] [PMCID]
13. Tunney MM, Field TR, Moriarty TF, Patrick S, Doering G, Muhlebach MS, et al. Detection of anaerobic bacteria in high numbers in sputum from patients with cystic fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2008;177(9):995-1001. [DOI:10.1164/rccm.200708-1151OC] [PMID]
14. Gajdács M, Spengler G, Urbán E. Identification and Antimicrobial Susceptibility Testing of Anaerobic Bacteria: Rubik's Cube of Clinical Microbiology?. Antibiotics. 2017;6(4):25. [DOI:10.3390/antibiotics6040025] [PMID] [PMCID]
15. Leber AL. Clinical Microbiology Procedures Handbook: John Wiley & Sons; 2020.
16. Nagy E, Boyanova L, Justesen US. How to isolate, identify and determine antimicrobial susceptibility of anaerobic bacteria in routine laboratories. Clin Microbiol Infect. 2018;24(11):1139-48. [DOI:10.1016/j.cmi.2018.02.008] [PMID]
17. Nwaokorie FO, Coker A, Ogunsola F, Avila-Campos MJ, Ayanbadejo P, Umeizudike K, et al. Isolation and molecular identification of Fusobacterium nucleatum from Nigerian patients with oro-facial infections. West Afr J Med. 2011;30(2):1-5.
18. Abellan-Schneyder I, Matchado MS, Reitmeier S, Sommer A, Sewald Z, Baumbach J, et al. Primer, pipelines, parameters: issues in 16S rRNA gene sequencing. Msphere. 2021;6(1):10-128. [DOI:10.1128/mSphere.01202-20] [PMID] [PMCID]
19. Kumar S, Stecher G, Li M, Knyaz C, Tamura K. MEGA X: molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Mol Biol Evol. 2018;35(6):1547. [DOI:10.1093/molbev/msy096] [PMID] [PMCID]
20. CLSI. Methods for Antimicrobial Susceptibility Testing of Anaerobic Bacteria; Approved Standard. CLSI Document M11-A8; CLSI: Wayne, PA, USA. 2012. Access from: [https://clsi.org/media/1468/m11a8_sample.pdf]
21. CLSI. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing, M100, 30st ed. CLSI supplement M100. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute. 2020. Access from: [https://clsi.org/media/3481/m100ed30_sample.pdf]
22. La Rosa R, Johansen HK, Molin S. Adapting to the airways: metabolic requirements of Pseudomonas aeruginosa during the infection of cystic fibrosis patients. Metabolites. 2019;9(10):234. [DOI:10.3390/metabo9100234] [PMID] [PMCID]
23. Lamoureux C, Guilloux CA, Beauruelle C, Gouriou S, Ramel S, Dirou A, et al. An observational study of anaerobic bacteria in cystic fibrosis lung using culture dependant and independent approaches. Sci Rep. 2021;11(1):6845. [DOI:10.1038/s41598-021-85592-w] [PMID] [PMCID]
24. Thornton CS, Surette MG. Potential contributions of anaerobes in cystic fibrosis airways. J Clin Microbiol. 2021;59(3):10-128. [DOI:10.1128/JCM.01813-19] [PMID] [PMCID]
25. Skolnik K, Quon BS. Recent advances in the understanding and management of cystic fibrosis pulmonary exacerbations. F1000Res. 2018;7:F1000 Faculty Rev-575. [DOI:10.12688/f1000research.13926.1] [PMID] [PMCID]
26. Nicod LP, Kolls JK. Chair's summary: mechanisms of exacerbation of lung diseases. Ann Am Thorac Soc. 2015;12(Supplement 2):S112-S4. [DOI:10.1513/AnnalsATS.201503-139AW] [PMID] [PMCID]
27. Muhlebach MS, Hatch JE, Einarsson GG, McGrath SJ, Gilipin DF, Lavelle G, et al. Anaerobic bacteria cultured from cystic fibrosis airways correlate to milder disease: a multisite study. Eur Respir J. 2018;52(1):1800242. [DOI:10.1183/13993003.00242-2018] [PMID] [PMCID]
28. Moogahi S, Beni FT, Hashemzadeh M, Dezfuli AA. Molecular identification and biofilm formation of aerobic and anaerobic coinfection bacterial isolated from cystic fibrosis patients in southwest Iran from 2014 to 2022. Mol Biol Rep. 2023;50(10):8225-35. [DOI:10.1007/s11033-023-08724-7] [PMID]
29. Goudarzi SM, Arani YS, Ali AA, Mohammadi P, Ghorbanmehr N, Modaresi M, et al. Comparison of culture and PCR-DGGE methods to evaluate the airways of cystic fibrosis patients and determination of their antibiotic resistance profile. Iran J Microbiol. 2023;15(6):750-8.
30. Tunney MM, Field TR, Moriarty TF, Patrick S, Doering G, Muhlebach MS, et al. Detection of anaerobic bacteria in high numbers in sputum from patients with cystic fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2008;177(9):995-1001. [DOI:10.1164/rccm.200708-1151OC] [PMID]
31. Rhoads DD, Wolcott RD, Sun Y, Dowd SE. Comparison of Culture and Molecular Identification of Bacteria in Chronic Wounds. Int J Mol Sci. 2012;13(3):2535-50. [DOI:10.3390/ijms13032535] [PMID] [PMCID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
