سال 18، شماره 2 - ( فروردین - اردیبهشت 1403 )                   جلد 18 شماره 2 صفحات 88-80 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Hamayeli H, Abdi Ali A, Attaran B, Shafiei M, modaresi M. Isolation, Identification and Antibiotic Resistance of Anaerobic Bacteria in Sputum of Cystic Fibrosis Patients from children's medical center of Tehran, Iran. Iran J Med Microbiol 2024; 18 (2) :80-88
URL: http://ijmm.ir/article-1-2340-fa.html
جداسازی، شناسایی و مقاومت آنتی بیوتیکی باکتری های بی هوازی در خلط بیماران فیبروز سیستیک از مرکز طبی کودکان تهران، ایران. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1403; 18 (2) :80-88

URL: http://ijmm.ir/article-1-2340-fa.html


چکیده:   (268 مشاهده)
زمینه و هدف: به دنبال نقص ژنتیکی در فیبروز سیستیک (CF)، تجمع موکوس و شیب هیپوکسیک در ریه­ ها ایجاد می­شود که شرایط را برای کلونیزاسیون باکتری­های بی هوازی ایجاد می­کند. این مطالعه به بررسی تفاوت بین شیوع برخی از باکتری­های بی هوازی و مقاومت آنتی بیوتیکی در گروه ­های سالم و CF می­پردازد.
مواد و روش­‌ها: در این پژوهش، باکتری­‌های بی‌هوازی در نمونه­‌های خلط بیماران CF (50 نفر) و افراد سالم (18 نفر) در شهر تهران به روش کشت در سال 1401 مورد بررسی قرار گرفتند. نمونه­ ها بر روی بروسلا بلاد آگار (BA BHIآگار با ونکومایسین، LKV و BA با نئومایسین و ونکومایسین کشت داده شدند. جدایه­ های گرم منفی با روش­های بیوشیمیایی و ایزوله­ های گرم مثبت با استفاده از توالی ­یابی  16S rRNAشناسایی شدند.MIC  جدایه ­های باکتریایی برای آمپی سیلین، کلیندامایسین و آمپی سیلین/سولباکتام با استفاده از استریپ­های E-test تعیین گردید.
یافته ­ها: باکتری­های بی هوازی به ترتیب در 33 درصد و 24 درصد از گروه ­های سالم و CF جداسازی گردیدند. جدایه­ های شناسایی شده عبارتند از: Dialister spp. ،Fusobacterium spp. ، Lactobacillus spp. و .Prevotella spp می باشند.
 جدایه­های Fusobacterium  از گروه سالم به آمپی سیلین حساس بودند و 33 درصد از جدایه­های Fusobacterium  از گروه CF نسبت به این آنتی بیوتیک مقاومت نشان دادند.
نتیجه­ گیری: در این مطالعه وجود باکتری­های بی هوازی در ریه افراد سالم و CF مشخص گردید. فراوانی کل این باکتری­ها در گروه سالم بیشتر از گروه CF می­باشد. فراوانی باکتری گرم مثبت Lactobacillus، به عنوان باکتری بالقوه مفید، در بیماران CF کمتر از افراد سالم است.
 
متن کامل [PDF 1057 kb]   (17 دریافت)    
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: باکتری شناسی پزشکی
دریافت: 1402/11/20 | پذیرش: 1403/2/19 | انتشار الکترونیک: 1403/3/5

فهرست منابع
1. Lu Z, Imlay JA. When anaerobes encounter oxygen: mechanisms of oxygen toxicity, tolerance and defence. Nat Rev Microbiol. 2021;19(12):774-85. [DOI:10.1038/s41579-021-00583-y] [PMID] [PMCID]
2. Chen X-F, Hou X, Xiao M, Zhang L, Cheng J-W, Zhou M-L, et al. Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Time of Flight Mass Spectrometry (MALDI-TOF MS) Analysis for the Identification of Pathogenic Microorganisms: A Review. Microorganisms. 2021;9(7):1536. [DOI:10.3390/microorganisms9071536] [PMID] [PMCID]
3. Alves J, Peres S, Gonçalves E, Mansinho K. Anaerobic Bacteria with Clinical Relevance: Morphologic and Taxonomic Classification, Distribution among Human Microbiota and Microbiologic Diagnosis. Acta Med Port. 2017;30(5):409-17. [DOI:10.20344/amp.8098] [PMID]
4. McIlvanna E, Linden GJ, Craig SG, Lundy FT, James JA. Fusobacterium nucleatum and oral cancer: a critical review. BMC Cancer. 2021;21:1212. [DOI:10.1186/s12885-021-08903-4] [PMID] [PMCID]
5. Thornton CS, Acosta N, Surette MG, Parkins MD. Exploring the Cystic Fibrosis Lung Microbiome: Making the Most of a Sticky Situation. J Pediatr Infect Dis. 2022;11(Supplement_2):S13-S22. [DOI:10.1093/jpids/piac036] [PMID] [PMCID]
6. Lambiase A, Catania MR, Rossano F. Anaerobic bacteria infection in cystic fibrosis airway disease. New Microbiol. 2010;33(3):185-94. [DOI:10.4081/mm.2011.2357]
7. Stokowa-Sołtys K, Wojtkowiak K, Jagiełło K. Fusobacterium nucleatum - Friend or foe?. J Inorg Biochem. 2021;224:111586. [DOI:10.1016/j.jinorgbio.2021.111586] [PMID]
8. Shi T, Wang J, Dong J, Hu P, Guo Q. Periodontopathogens Porphyromonas gingivalis and Fusobacterium nucleatum and their roles in the progression of respiratory diseases. Pathogens. 2023;12(9):1110. [DOI:10.3390/pathogens12091110] [PMID] [PMCID]
9. Morio F, Jean-Pierre H, Dubreuil L, Jumas-Bilak E, Calvet L, Mercier G, et al. Antimicrobial Susceptibilities and Clinical Sources of Dialister Species. J Antimicrob Agents Chemother. 2007;51(12):4498-501. [DOI:10.1128/AAC.00538-07] [PMID] [PMCID]
10. Larsen JM. The immune response to Prevotella bacteria in chronic inflammatory disease. Immunology. 2017;151(4):363-74. [DOI:10.1111/imm.12760] [PMID] [PMCID]
11. López-Causapé C, Rojo-Molinero E, Macià MD, Oliver A. The problems of antibiotic resistance in cystic fibrosis and solutions. Expert Rev Respir Med. 2015;9(1):73-88. [DOI:10.1586/17476348.2015.995640] [PMID]
12. Flynn JM, Cameron LC, Wiggen TD, Dunitz JM, Harcombe WR, Hunter RC. Disruption of Cross-Feeding Inhibits Pathogen Growth in the Sputa of Patients with Cystic Fibrosis. MSphere. 2020;5(2):10-128. [DOI:10.1128/mSphere.00343-20] [PMID] [PMCID]
13. Tunney MM, Field TR, Moriarty TF, Patrick S, Doering G, Muhlebach MS, et al. Detection of anaerobic bacteria in high numbers in sputum from patients with cystic fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2008;177(9):995-1001. [DOI:10.1164/rccm.200708-1151OC] [PMID]
14. Gajdács M, Spengler G, Urbán E. Identification and Antimicrobial Susceptibility Testing of Anaerobic Bacteria: Rubik's Cube of Clinical Microbiology?. Antibiotics. 2017;6(4):25. [DOI:10.3390/antibiotics6040025] [PMID] [PMCID]
15. Leber AL. Clinical Microbiology Procedures Handbook: John Wiley & Sons; 2020.
16. Nagy E, Boyanova L, Justesen US. How to isolate, identify and determine antimicrobial susceptibility of anaerobic bacteria in routine laboratories. Clin Microbiol Infect. 2018;24(11):1139-48. [DOI:10.1016/j.cmi.2018.02.008] [PMID]
17. Nwaokorie FO, Coker A, Ogunsola F, Avila-Campos MJ, Ayanbadejo P, Umeizudike K, et al. Isolation and molecular identification of Fusobacterium nucleatum from Nigerian patients with oro-facial infections. West Afr J Med. 2011;30(2):1-5.
18. Abellan-Schneyder I, Matchado MS, Reitmeier S, Sommer A, Sewald Z, Baumbach J, et al. Primer, pipelines, parameters: issues in 16S rRNA gene sequencing. Msphere. 2021;6(1):10-128. [DOI:10.1128/mSphere.01202-20] [PMID] [PMCID]
19. Kumar S, Stecher G, Li M, Knyaz C, Tamura K. MEGA X: molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Mol Biol Evol. 2018;35(6):1547. [DOI:10.1093/molbev/msy096] [PMID] [PMCID]
20. CLSI. Methods for Antimicrobial Susceptibility Testing of Anaerobic Bacteria; Approved Standard. CLSI Document M11-A8; CLSI: Wayne, PA, USA. 2012. Access from: [https://clsi.org/media/1468/m11a8_sample.pdf]
21. CLSI. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing, M100, 30st ed. CLSI supplement M100. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute. 2020. Access from: [https://clsi.org/media/3481/m100ed30_sample.pdf]
22. La Rosa R, Johansen HK, Molin S. Adapting to the airways: metabolic requirements of Pseudomonas aeruginosa during the infection of cystic fibrosis patients. Metabolites. 2019;9(10):234. [DOI:10.3390/metabo9100234] [PMID] [PMCID]
23. Lamoureux C, Guilloux CA, Beauruelle C, Gouriou S, Ramel S, Dirou A, et al. An observational study of anaerobic bacteria in cystic fibrosis lung using culture dependant and independent approaches. Sci Rep. 2021;11(1):6845. [DOI:10.1038/s41598-021-85592-w] [PMID] [PMCID]
24. Thornton CS, Surette MG. Potential contributions of anaerobes in cystic fibrosis airways. J Clin Microbiol. 2021;59(3):10-128. [DOI:10.1128/JCM.01813-19] [PMID] [PMCID]
25. Skolnik K, Quon BS. Recent advances in the understanding and management of cystic fibrosis pulmonary exacerbations. F1000Res. 2018;7:F1000 Faculty Rev-575. [DOI:10.12688/f1000research.13926.1] [PMID] [PMCID]
26. Nicod LP, Kolls JK. Chair's summary: mechanisms of exacerbation of lung diseases. Ann Am Thorac Soc. 2015;12(Supplement 2):S112-S4. [DOI:10.1513/AnnalsATS.201503-139AW] [PMID] [PMCID]
27. Muhlebach MS, Hatch JE, Einarsson GG, McGrath SJ, Gilipin DF, Lavelle G, et al. Anaerobic bacteria cultured from cystic fibrosis airways correlate to milder disease: a multisite study. Eur Respir J. 2018;52(1):1800242. [DOI:10.1183/13993003.00242-2018] [PMID] [PMCID]
28. Moogahi S, Beni FT, Hashemzadeh M, Dezfuli AA. Molecular identification and biofilm formation of aerobic and anaerobic coinfection bacterial isolated from cystic fibrosis patients in southwest Iran from 2014 to 2022. Mol Biol Rep. 2023;50(10):8225-35. [DOI:10.1007/s11033-023-08724-7] [PMID]
29. Goudarzi SM, Arani YS, Ali AA, Mohammadi P, Ghorbanmehr N, Modaresi M, et al. Comparison of culture and PCR-DGGE methods to evaluate the airways of cystic fibrosis patients and determination of their antibiotic resistance profile. Iran J Microbiol. 2023;15(6):750-8.
30. Tunney MM, Field TR, Moriarty TF, Patrick S, Doering G, Muhlebach MS, et al. Detection of anaerobic bacteria in high numbers in sputum from patients with cystic fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2008;177(9):995-1001. [DOI:10.1164/rccm.200708-1151OC] [PMID]
31. Rhoads DD, Wolcott RD, Sun Y, Dowd SE. Comparison of Culture and Molecular Identification of Bacteria in Chronic Wounds. Int J Mol Sci. 2012;13(3):2535-50. [DOI:10.3390/ijms13032535] [PMID] [PMCID]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله میکروب شناسی پزشکی ایران می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق   ناشر: موسسه فرنام

© 2024 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Medical Microbiology

Designed & Developed by : Yektaweb Publishr: Farname Inc.