سال 16، شماره 2 - ( فروردین - اردیبهشت 1401 )
جلد 16 شماره 2 صفحات 147-141 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Ahmadi Z, Noormohammadi Z, Ranjbar R, Behzadi P. Prevalence of Tetracycline Resistance Genes tet (A, B, C, 39) in Klebsiella pneumoniae Isolated from Tehran, Iran. Iran J Med Microbiol 2022; 16 (2) :141-147
URL: http://ijmm.ir/article-1-1451-fa.html
URL: http://ijmm.ir/article-1-1451-fa.html
احمدی زینب، نورمحمدی زهرا، رنجبر رضا، بهزادی پیام. فراوانی ژن های مقاومت تتراسایکلین tet (A,B,C,39) در ایزوله های کلبسیلا پنومونیه، تهران، ایران. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1401; 16 (2) :141-147
زینب احمدی1 
، زهرا نورمحمدی1 ، رضا رنجبر2 ، پیام بهزادی3
، زهرا نورمحمدی1 ، رضا رنجبر2 ، پیام بهزادی3
1- گروه زیست فناوری - علوم زیستی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران
2- مرکز تحقیقات زیست شناسی مولکولی، موسسه زیست شناسی و مسمومیت سیستم ها، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران ،Ranjbarre@gmail.com
3- گروه میکروب شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شهر قدس، تهران، ایران
2- مرکز تحقیقات زیست شناسی مولکولی، موسسه زیست شناسی و مسمومیت سیستم ها، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران ،
3- گروه میکروب شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شهر قدس، تهران، ایران
چکیده: (4150 مشاهده)
زمینه و اهداف: کلبسیلا پنومونیه بدلیل مقاومت به آنتی‌بیوتیک‌های رایج یکی از سه پاتوژنی است که در حوزه کنترل و درمان بیماری‌ها به مشکل جهانی تبدیل شده است. به همین دلیل بررسی ژن‌های ایجاد کننده مقاومت آنتی‌بیوتیکی در آن، اهمیت دارد. بنابراین، هدف این مطالعه بررسی فنوتیپی و ژنوتیپی فراوانی مقاومت به تتراسایکلین در ایزوله‌های بالینی کلبسیلا پنومونیه در تهران می باشد.
مواد و روش کار: در این مطالعه ۱۰۰ ایزوله کلبسیلا پنومونیه جداشده از نمونه های بالینی (ادرار) طی سال‌های ۱۳۹۸-۱۳۹۷ بررسی شدند. تست‌های فنوتیپی میکروبی و بیوشیمیایی بر روی آنها انجام شد و تست‌های ژنوتیپی نیز برای تعیین فراوانی وجود ژن‌های مقاومت آنتی بیوتیکی (tet (A, B, C, ۳۹ انجام شد.
یافته ها: از ۱۰۰ ایزوله کلبسیلا پنومونیه، ۴۹ ایزوله به تتراسایکلین‌ها مقاوم بودند. نتایج روش مولتی پلکس PCR نشان داد که ۳۱ نمونه دارای ژن tetA، ۷ ایزوله دارای ژن tetB، ۲۱ نمونه دارای tetC و ۸ ایزوله دارای tet۳۹ بودند. بطور همزمان هیچ یک از ایزوله ها هر چهار ژن تتراسایکلین را نداشتند.
نتیجه‌گیری: یافته‌های این تحقیق نشان داد که ایزوله های بدست آمده دارای حداقل یک ژن و حداکثر ۲ ژن مقاومت به تتراسایکلین بودند. بیشتین فراوانی ژن tetA و کمترین فراوانی tet۳۹ بود، بیشترین ترکیب دوتایی ژن‌ها tetA-tetC و کمترین tetA-tet۳۹ بود.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
مقاومت پادزیستی (آنتی بیوتیکی)
دریافت: 1400/6/4 | پذیرش: 1400/10/1 | انتشار الکترونیک: 1400/11/21
دریافت: 1400/6/4 | پذیرش: 1400/10/1 | انتشار الکترونیک: 1400/11/21
فهرست منابع
1. Marr CM, Russo TA. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae: a new public health threat. Expert Rev Anti Infect Ther. 2019;17(2):71-3. [DOI:10.1080/14787210.2019.1555470] [PMID] [PMCID]
2. Fatehi T, Anvari M, Ranji N. Investigating Antibiotic Resistance and The Frequency of SHVand TEM Extended Expecterum Beta Lactamase Genes in klebsiella penumoniea Isolated from Blood Samples of Neonates Admitted to Some Health Centers in Rasht. Iran J Med Microbiol. 2017;11(4):57-63.
3. Masoumi Zavaryani S, Mirnejad R, Piranfar V, Moosazadeh Moghaddam M, Sajjadi N, Saeedi S. Assessment of Susceptibility to Five Common Antibiotics and Their Resistance Pattern in Clinical Enterococcus Isolates. Iran J Pathol. 2020;15(2):96-105. [DOI:10.30699/ijp.2020.114009.2236] [PMID] [PMCID]
4. Ranjbar R, Afshar D. Evaluation of (GTG) 5-PCR for Genotyping of Klebsiella pneumonia Strains Isolated from Patients with Urinary Tract Infections. Iran J Public Health. 2019;48(10):1879-84. [DOI:10.18502/ijph.v48i10.3496]
5. Tian L, Sun Z, Zhang Z. Antimicrobial resistance of pathogens causing nosocomial bloodstream infection in Hubei Province, China, from 2014 to 2016: a multicenter retrospective study. BMC Public Health. 2018;18(1):1121. [DOI:10.1186/s12889-018-6013-5] [PMID] [PMCID]
6. Zhan L, Wang S, Guo Y, Jin Y, Duan J, Hao Z, et al. Outbreak by Hypermucoviscous Klebsiella pneumoniae ST11 Isolates with Carbapenem Resistance in a Tertiary Hospital in China. Front Cell Infect Microbiol. 2017;7:182. [DOI:10.3389/fcimb.2017.00182] [PMID] [PMCID]
7. Dalir A, Razavi S, Talebi M, Masjedian Jazi F, Zahedi Bialvaei A, Mirshekar M, et al. Antibiotic Susceptibility Pattern and Distribution of Virulence Factors Among Klebsiella pneumoniae Isolated from Healthy Volunteers. Iran J Med Microbiol. 2021;15(6):676-83.
8. Ranjbar R, Memariani H, Sorouri R, Memariani M. Distribution of virulence genes and genotyping of CTX-M-15-producing Klebsiella pneumoniae isolated from patients with community-acquired urinary tract infection (CA-UTI). Microb Pathog. 2016;100:244-9. [DOI:10.1016/j.micpath.2016.10.002] [PMID]
9. Bina M, Pournajaf A, Mirkalantari S, Talebi M, Irajian G. Detection of the Klebsiella pneumoniae carbapenemase (KPC) in K. pneumoniae Isolated from the Clinical Samples by the Phenotypic and Genotypic Methods. Iran J Pathol. 2015;10(3):199-205.
10. Lu MC, Chen YT, Chiang MK, Wang YC, Hsiao PY, Huang YJ, et al. Colibactin Contributes to the Hypervirulence of pks(+) K1 CC23 Klebsiella pneumoniae in Mouse Meningitis Infections. Front Cell Infect Microbiol. 2017;7(103):103. [DOI:10.3389/fcimb.2017.00103]
11. Habibinava F, Zolfaghari MR, Sabouri Shahrbabak S, Zargar M, Soleimani M. Isolation of Lytic Bacteriophages from Sewage Samples against MDR-Klebsiella pneumoniae and MDR-Enterobacter aerogenes: A potential tool for medical purposes. Iran J Med Microbiol. 2021;15(1):46-66. [DOI:10.30699/ijmm.15.1.46]
12. Roshdi Maleki M, Taghinejad J. Prevalence of Extended-spectrum Beta-lactamases (ESBL) Types blaTEM and blaSHV in Klebsiella pneumoniae Strains Isolated from Clinical Samples by PCR in Miandoab, West Azerbaijan. Iran J Med Microbiol. 2021;15(4):458-64. [DOI:10.30699/ijmm.15.4.458]
13. Ahmed T, Islam T, Sultana Soha R, Akter E. Correlation of the Pathogenic Bacteria Isolated from Sputum Samples with Age, Sex, Seasonal Variation and Determination of Their Antibiotic Resistance Pattern. Iran J Med Microbiol. 2021;15(6):700-7.
14. Golan Y. Empiric therapy for hospital-acquired, Gram-negative complicated intra-abdominal infection and complicated urinary tract infections: a systematic literature review of current and emerging treatment options. BMC Infect Dis. 2015;15:313. [DOI:10.1186/s12879-015-1054-1] [PMID] [PMCID]
15. Paulsen IT, Brown MH, Skurray RA. Proton-dependent multidrug efflux systems. Microbiol Rev. 1996;60(4):575-608. [DOI:10.1128/mr.60.4.575-608.1996] [PMID] [PMCID]
16. Kim S, Jensen JN, Aga DS, Weber AS. Tetracycline as a selector for resistant bacteria in activated sludge. Chemosphere. 2007;66(9):1643-51. [DOI:10.1016/j.chemosphere.2006.07.066] [PMID]
17. Garcia PG, Silva VL, Diniz CG. Occurrence and antimicrobial drug susceptibility patterns of commensal and diarrheagenic Escherichia coli in fecal microbiota from children with and without acute diarrhea. J Microbiol. 2011;49(1):46-52. [DOI:10.1007/s12275-011-0172-8] [PMID]
18. Taylor DE, Chau A. Tetracycline resistance mediated by ribosomal protection. Antimicrob Agents Chemother. 1996;40(1):1-5. [DOI:10.1128/AAC.40.1.1] [PMID]
19. Osei Sekyere J, Govinden U, Bester LA, Essack SY. Colistin and tigecycline resistance in carbapenemase-producing Gram-negative bacteria: emerging resistance mechanisms and detection methods. J Appl Microbiol. 2016;121(3):601-17. [DOI:10.1111/jam.13169] [PMID]
20. Patterson AJ, Rincon MT, Flint HJ, Scott KP. Mosaic tetracycline resistance genes are widespread in human and animal fecal samples. Antimicrob Agents Chemother. 2007;51(3):1115-8. [DOI:10.1128/AAC.00725-06] [PMID] [PMCID]
21. Rezashateri M, Ahrabi M, Salehi M. Molecular Analysis of the Presence of pvl, spa, and mecA Genes and Their Correlation with a Range of Antibiotics in Staphylococcus aureus Collected from Burn Patients. Iran J Med Microbiol. 2021;15(6):625-37.
22. Ghasemnejad A, Doudi M, Amirmozafari N. Evaluation of Modified Hodge Test as a Non-molecular Assay for Accurate Detection of KPC-producing Klebsiella pneumoniae. Pol J Microbiol. 2018;67(3):291-5. [DOI:10.21307/pjm-2018-034] [PMID] [PMCID]
23. Wayne P. Clinical and laboratory standards institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. 2011.
24. Ghasemnejad A, Doudi M, Amirmozafari N. The role of the bla KPC gene in antimicrobial resistance of Klebsiella pneumoniae. Iran J Microbiol. 2019;11(4):288-93. [DOI:10.18502/ijm.v11i4.1465] [PMID] [PMCID]
25. Liu Y, Liu C, Zheng W, Zhang X, Yu J, Gao Q, et al. PCR detection of Klebsiella pneumoniae in infant formula based on 16S-23S internal transcribed spacer. Int J Food Microbiol. 2008;125(3):230-5. [DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2008.03.005] [PMID]
26. Sengelov G, Agerso Y, Halling-Sorensen B, Baloda SB, Andersen JS, Jensen LB. Bacterial antibiotic resistance levels in Danish farmland as a result of treatment with pig manure slurry. Environ Int. 2003;28(7):587-95. [DOI:10.1016/S0160-4120(02)00084-3]
27. Henriot CP, Martak D, Cuenot Q, Loup C, Masclaux H, Gillet F, et al. Occurrence and ecological determinants of the contamination of floodplain wetlands with Klebsiella pneumoniae and pathogenic or antibiotic-resistant Escherichia coli. FEMS Microbiol Ecol. 2019;95(8). [DOI:10.1093/femsec/fiz097] [PMID] [PMCID]
28. Chanbari M, Mirnejad R, Babapour E. Evaluation of Resistance to Fluoroquinolones and Its Relationship whit parC Gene Mutation in Klebsiella pneumoniae Clinical Isolates. Iran J Med Microbiol. 2020;14(3):270-89. [DOI:10.30699/ijmm.14.3.270]
29. Ribeiro PC, Monteiro AS, Marques SG, Monteiro SG, Monteiro-Neto V, Coqueiro MM, et al. Phenotypic and molecular detection of the bla KPC gene in clinical isolates from inpatients at hospitals in Sao Luis, MA, Brazil. BMC Infect Dis. 2016;16(1):737. [DOI:10.1186/s12879-016-2072-3] [PMID] [PMCID]
30. Taitt CR, Leski TA, Erwin DP, Odundo EA, Kipkemoi NC, Ndonye JN, et al. Antimicrobial resistance of Klebsiella pneumoniae stool isolates circulating in Kenya. PLoS One. 2017;12(6):e0178880. [DOI:10.1371/journal.pone.0178880] [PMID] [PMCID]
31. Heidary M, Nasiri MJ, Dabiri H, Tarashi S. Prevalence of Drug-resistant Klebsiella pneumoniae in Iran: A Review Article. Iran J Public Health. 2018;47(3):317-26.
32. Bokaeian M, Saeidi S, Shahi Z, Kadaei V. tetA and tetB Genes in Klebsiella Pneumoniae Isolated From Clinical Samples. Gene, Cell and Tissue. 2014;1(2):e18152. [DOI:10.17795/gct-18152]
33. Kashefieh M, Hosainzadegan H, Baghbanijavid S, Ghotaslou R. The Molecular Epidemiology of Resistance to Antibiotics among Klebsiella pneumoniae Isolates in Azerbaijan, Iran. J Trop Med. 2021;2021:9195184. [DOI:10.1155/2021/9195184] [PMID] [PMCID]
34. Adelowo OO, Fagade OE. The tetracycline resistance gene tet39 is present in both Gram-negative and Gram-positive bacteria from a polluted river, Southwestern Nigeria. Lett Appl Microbiol. 2009;48(2):167-72. [DOI:10.1111/j.1472-765X.2008.02523.x] [PMID]
35. Bauer-Garland J, Frye JG, Gray JT, Berrang ME, Harrison MA, Fedorka-Cray PJ. Transmission of Salmonella enterica serotype Typhimurium in poultry with and without antimicrobial selective pressure. J Appl Microbiol. 2006;101(6):1301-8. [DOI:10.1111/j.1365-2672.2006.03036.x] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
