سال 18، شماره 4 - ( مرداد - شهریور 1403 )
جلد 18 شماره 4 صفحات 222-214 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Farshchi Tabrizi A, Rafati Zomorodi A, Kakian F, Moazemy A, Kasraian L, Nakhaeitazeji S et al . Prevalence of Chlorhexidine-Tolerant Pseudomonas aeruginosa and Correlation with Antibiotic Resistance. Iran J Med Microbiol 2024; 18 (4) :214-222
URL: http://ijmm.ir/article-1-2413-fa.html
URL: http://ijmm.ir/article-1-2413-fa.html
فرشچی تبریزی امیرحسین، رأفتی زمردی ابوالفضل، کاکیان فرشاد، معظمی آیدا، کسراییان لیلا، نخعی تذرجی سیتا و همکاران.. فراوانی پسودوموناس آئروژینوزا تحمل کننده کلرهگزیدین و همبستگی آن ها با مقاومت آنتی بیوتیکی. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1403; 18 (4) :214-222
امیرحسین فرشچی تبریزی1 
، ابوالفضل رأفتی زمردی2 ، فرشاد کاکیان3 ، آیدا معظمی1 ، لیلا کسراییان4 ، سیتا نخعی تذرجی5 ، محمد معتمدی فر6
، ابوالفضل رأفتی زمردی2 ، فرشاد کاکیان3 ، آیدا معظمی1 ، لیلا کسراییان4 ، سیتا نخعی تذرجی5 ، محمد معتمدی فر6
1- کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
2- کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران و گروه باکتری شناسی و ویروس شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
3- گروه باکتری شناسی و ویروس شناسی، دانشگاه علوم پزشکی لارستان، لارستان، ایران
4- مرکز تحقیقات انتقال خون، مؤسسه عالی آموزشی و پژوهشی طب انتقال خون، شیراز، ایران
5- گروه باکتری شناسی و ویروس شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
6- مرکز تحقیات ایدز، موسسه بهداشت، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران ،motamedm@sums.ac.ir
2- کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران و گروه باکتری شناسی و ویروس شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
3- گروه باکتری شناسی و ویروس شناسی، دانشگاه علوم پزشکی لارستان، لارستان، ایران
4- مرکز تحقیقات انتقال خون، مؤسسه عالی آموزشی و پژوهشی طب انتقال خون، شیراز، ایران
5- گروه باکتری شناسی و ویروس شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
6- مرکز تحقیات ایدز، موسسه بهداشت، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران ،
چکیده: (872 مشاهده)
زمینه و اهداف: پسودوموناس آئروژینوزا یکی از باکتری های شایع محیطی بوده که ارتباط آن با عفونت های بیمارستانی اثبات شده است. یکی از ضدعفونی کننده هایی که در محیط بیمارستان به شکل رایج استفاده می شود کلرهگزیدین می باشد که می تواند با ایجاد فشار انتخابی باعث پیدایش مقاومت آنتی بیوتیکی متقاطع و همچنین سویه های مقاوم به چند دارو شود. در این مطالعه هدف بررسی فراوانی جدایه های دارای تحمل در برابر کلرهگزیدین و حضور ژن های pslA، pelA، qacE و qacΔE۱ در بین جدایه های پسودوموناس آئروژینوزا در شیراز، جنوب غربی ایران بوده است.
مواد و روش کار: در بازه زمانی اکتبر ۲۰۲۰ الی جولای ۲۰۲۱ مجموعا ۱۲۰ جدایه پسودوموناس آئروژینوزا از بیماران بستری در بیمارستان نمازی شهر شیراز، جنوب غرب ایران جمع آوری شد. تعیین حساسیت آنتی بیوتیکی و حساسیت در برابر کلرهگزیدین به ترتیب با روش های انتشار از دیسک و میکرو براث دایلوشن انجام شد. در نهایت فراوانی ژن های pslA، pelA، qacE و qacΔE۱ در بین تمام جدایه های پسودوموناس آئروژینوزا ارزیابی شد.
یافته ها: بیشترین مقاومت به ترتیب در برابر سفتریاکسون و سفتازیدیم با فراوانی (۸۰/۸%) ۹۷ از ۱۲۰ جدایه و (۸۰%) ۹۶ از ۱۲۰ جدایه پسودوموناس آئروژینوزا مشاهده شد. در مقابل کمترین میزان مقاومت در برابر آمیکاسین با فراوانی (۴/۲%) ۵ از ۱۲۰ جدایه، افلوکساسین (۵/۸%) ۷ جدایه از ۱۲۰ و مروپنم (۸/۳%) ۱۰ از ۱۲۰ جدایه پسودومونناس آئروژینوزا مشاهده شد. در بین ۱۲۰ جدایه پسودوموناس آئروژینوزا، ۳۳ جدایه (۲۷/۵%) در برابر کلرهگزیدین دارای تحمل بودند همچنین ۲۲ جدایه (۱۸/۳%) دارای مقاومت چند دارویی بودند. ارتباط معنادار در بین جدایه های پسودوموناس آئروژینوزا مقاوم به چند دارو و دارای تحمل در برابر کلرهگزیدین مشاهده شد (۰.۰۵ <P).
نتیجه‌گیری: وجود ارتباط معنادار در بین فراوانی جدایه های پسودوموناس آئروژینوزا مقاوم به چند دارو و جدایه های دارای تحمل در برابر کلرهگزیدین، باعث تقویت فرضیه احتمال ایجاد مقاومت متقاطع در اثر مصرف کلرهگزیدین شد. بنابراین بررسی میزان حساسیت در برابر کلرهگزیدین در محیط بیمارستان و آزمایشگاه های بالینی ضروری به نظر می رسد.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
باکتری شناسی پزشکی
دریافت: 1403/4/7 | پذیرش: 1403/6/22 | انتشار الکترونیک: 1403/7/8
دریافت: 1403/4/7 | پذیرش: 1403/6/22 | انتشار الکترونیک: 1403/7/8
فهرست منابع
1. Glossary Disinfection and Sterilization Guidelines Library Infection Control CDC. Accessed on 01 October 2024. Available online: [https://www.cdc.gov/infection-control/hcp/disinfection-and-sterilization/index.html]
2. Betchen M, Giovinco HM, Curry M, Luu J, Fraimow H, Carabetta VJ, et al. Evaluating the effectiveness of hospital antiseptics on multidrug-resistant Acinetobacter baumannii: Understanding the relationship between microbicide and antibiotic resistance. Antibiotics. 2022;11(5):614. [DOI:10.3390/antibiotics11050614]
3. Namaki M, Habibzadeh S, Vaez H, Arzanlou M, Safarirad S, Bazghandi SA, et al. Prevalence of resistance genes to biocides in antibiotic-resistant Pseudomonas aeruginosa clinical isolates. Mol Biol Rep. 2022;49(3):2149-55. [DOI:10.1007/s11033-021-07032-2]
4. Zheng X, Zhang X, Zhou B, Liu S, Chen W, Chen L, et al. Clinical characteristics, tolerance mechanisms, and molecular epidemiology of reduced susceptibility to chlorhexidine among Pseudomonas aeruginosa isolated from a teaching hospital in China. Int J Antimicrob Agents. 2022;60(1):106605. [DOI:10.1016/j.ijantimicag.2022.106605]
5. Bock LJ, Wand ME, Sutton JM. Varying activity of chlorhexidine-based disinfectants against Klebsiella pneumoniae clinical isolates and adapted strains. J Hosp Infect. 2016;93(1):42-8. [DOI:10.1016/j.jhin.2015.12.019]
6. Rania K, Mohamed M, Waheed H, Nader N. Efflux pump genes and chlorhexidine resistance: Clue for Klebsiella pneumoniae infections in intensive care units, Egypt. Afr J Microbiol Res. 2014;8(21):2162-7. [DOI:10.5897/AJMR2014.6656]
7. Leshem T, Gilron S, Azrad M, Peretz A. Characterization of reduced susceptibility to chlorhexidine among Gram-negative bacteria. Microbes Infect. 2022;24(2):104891. [DOI:10.1016/j.micinf.2021.104891]
8. Gall E, Long A, Hall KK. Chlorhexidine bathing strategies for multidrug-resistant organisms: a summary of recent evidence. Journal of Patient Safety. 2020;16(3):S16-S22. [DOI:10.1097/PTS.0000000000000743]
9. Williamson DA, Carter GP, Howden BP. Current and emerging topical antibacterials and antiseptics: agents, action, and resistance patterns. Clin Microbiol Rev. 2017;30(3):827-60. [DOI:10.1128/CMR.00112-16]
10. Ahmadi N, Salimizand H, Zomorodi AR, Abbas JE, Ramazanzadeh R, Haghi F, et al. Genomic diversity of β-lactamase producing Pseudomonas aeruginosa in Iran; the impact of global high-risk clones. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2024;23(1):1-8. [DOI:10.1186/s12941-024-00668-5]
11. Reynolds D, Kollef M. The epidemiology and pathogenesis and treatment of Pseudomonas aeruginosa infections: an update. Drugs. 2021;81(18):2117-31. [DOI:10.1007/s40265-021-01635-6]
12. Vincent JL, Sakr Y, Singer M, Martin-Loeches I, Machado FR, Marshall JC, et al. Prevalence and outcomes of infection among patients in intensive care units in 2017. JAMA. 2020;323(15):1478-87. [DOI:10.1001/jama.2020.2717]
13. Botelho J, Grosso F, Peixe L. Antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa–Mechanisms, epidemiology and evolution. Drug Resist Updates. 2019;44:100640. [DOI:10.1016/j.drup.2019.07.002]
14. Simanek KA, Paczkowski JE. Resistance is not futile: the role of quorum sensing plasticity in Pseudomonas aeruginosa infections and its link to intrinsic mechanisms of antibiotic resistance. Microorganisms. 2022;10(6):1247. [DOI:10.3390/microorganisms10061247]
15. Hemati S, Kouhsari E, Sadeghifard N, Maleki A, Omidi N, Mahdavi Z, Pakzad I. Sub-minimum inhibitory concentrations of biocides induced biofilm formation in Pseudomonas aeruginosa. New Microbes New Infect. 2020;38:100794. [DOI:10.1016/j.nmni.2020.100794]
16. El-Banna T, Abd El-Aziz A, Sonbol F, El-Ekhnawy E. Adaptation of Pseudomonas aeruginosa clinical isolates to benzalkonium chloride retards its growth and enhances biofilm production. Mol Biol Rep. 2019;46:3437-43. [DOI:10.1007/s11033-019-04806-7]
17. Zomorodi AR, Mohseni N, Hafiz M, Nikoueian H, Hashemitabar G, Salimizand H, et al. Investigation of mobile colistin resistance (mcr) genes among carbapenem resistance Pseudomonas aeruginosa isolates from bovine mastitis in Mashhad, Iran. Gene Rep. 2022;29:101695. [DOI:10.1016/j.genrep.2022.101695]
18. Wayne PA. CLSI Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. CLSI Document Clinical Laboratory Standards Institute (CLSI): Wayne, PA, USA. 2017.
19. Tag ElDein MA, Yassin AS, El-Tayeb O, Kashef MT. Chlorhexidine leads to the evolution of antibiotic-resistant Pseudomonas aeruginosa. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2021;40(11):2349-61. [DOI:10.1007/s10096-021-04292-5]
20. Gomaa FA, Helal ZH, Khan MI. High prevalence of Bla NDM-1, Bla VIM, qacE, and qacEΔ1 genes and their association with decreased susceptibility to antibiotics and common hospital biocides in clinical isolates of Acinetobacter baumannii. Microorganisms. 2017;5(2):18. [DOI:10.3390/microorganisms5020018]
21. Kampf G. Acquired resistance to chlorhexidine–is it time to establish an ‘antiseptic stewardship’ initiative?. J Hosp Infect. 2016;94(3):213-27. [DOI:10.1016/j.jhin.2016.08.018]
22. Nakahara H, Kozukue H. Isolation of chlorhexidine-resistant Pseudomonas aeruginosa from clinical lesions. J Clin Microbiol. 1982;15(1):166-8. [DOI:10.1128/jcm.15.1.166-168.1982]
23. Rafati Zomorodi A, Rad M, Hashemitabar GR, Salimizand H. Molecular typing of cephalosporin resistant serovars of Salmonella enterica from poultry and farm animals. Bulg J Vet Med. 2020;23(2):178-86. [DOI:10.15547/bjvm.2196]
24. Ghadaksaz A, Fooladi AA, Hosseini HM, Amin M. The prevalence of some Pseudomonas virulence genes related to biofilm formation and alginate production among clinical isolates. J Appl Biomed. 2015;13(1):61-8. [DOI:10.1016/j.jab.2014.05.002]
25. Bazghandi SA, Arzanlou M, Peeridogaheh H, Vaez H, Sahebkar A, Khademi F. Prevalence of virulence genes and drug resistance profiles of Pseudomonas aeruginosa isolated from clinical specimens. Jundishapur J Microbiol. 2021;14(8):e118452 [DOI:10.5812/jjm.118452]
26. Heidari R, Farajzadeh Sheikh A, Hashemzadeh M, Farshadzadeh Z, Salmanzadeh S, Saki M. Antibiotic resistance, biofilm production ability and genetic diversity of carbapenem-resistant Pseudomonas aeruginosa strains isolated from nosocomial infections in southwestern Iran. Mol Biol Rep. 2022;49(5):3811-22. [DOI:10.1007/s11033-022-07225-3]
27. Ugwuanyi FC, Ajayi A, Ojo DA, Adeleye AI, Smith SI. Evaluation of efflux pump activity and biofilm formation in multidrug resistant clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa isolated from a Federal Medical Center in Nigeria. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2021;20:1-7. [DOI:10.1186/s12941-021-00417-y]
28. Saleem S, Bokhari H. Resistance profile of genetically distinct clinical Pseudomonas aeruginosa isolates from public hospitals in central Pakistan. J Infect Public Health. 2020;13(4):598-605. [DOI:10.1016/j.jiph.2019.08.019]
29. Sid Ahmed MA, Abdel Hadi H, Abu Jarir S, Al Khal AL, Al-Maslamani MA, Jass J, et al. Impact of an antimicrobial stewardship programme on antimicrobial utilization and the prevalence of MDR Pseudomonas aeruginosa in an acute care hospital in Qatar. JAC-Antimicrob Resist. 2020;2(3):dlaa050. [DOI:10.1093/jacamr/dlaa050]
30. Hassuna NA, Darwish MK, Sayed M, Ibrahem RA. Molecular epidemiology and mechanisms of high-level resistance to meropenem and imipenem in Pseudomonas aeruginosa. Infect Drug Resist. 2020:285-93. [DOI:10.2147/IDR.S233808]
31. Feng W, Huang Q, Wang Y, Yuan Q, Li X, Xia P, et al. Changes in the resistance and epidemiological characteristics of Pseudomonas aeruginosa during a ten-year period. J Microbiol Immunol Infect. 2021;54(2):261-6. [DOI:10.1016/j.jmii.2019.08.017]
32. Cabrera R, Fernández-Barat L, Vázquez N, Alcaraz-Serrano V, Bueno-Freire L, Amaro R, et al. Resistance mechanisms and molecular epidemiology of Pseudomonas aeruginosa strains from patients with bronchiectasis. J Antimicrob Chemother. 2022;77(6):1600-10. [DOI:10.1093/jac/dkac084]
33. Losito AR, Raffaelli F, Del Giacomo P, Tumbarello M. New drugs for the treatment of Pseudomonas aeruginosa infections with limited treatment options: a narrative review. Antibiotics. 2022;11(5):579. [DOI:10.3390/antibiotics11050579]
34. Ferreiro JL, Otero JÁ, Rivo AS, González LG, Conde IR, Soneira MF, et al. Outpatient therapy with piperacillin/tazobactam using elastomeric pumps in patients with Pseudomonas aeruginosa infection. Sci Rep. 2021;11(1):8610. [DOI:10.1038/s41598-021-88179-7]
35. Buxser S. Has resistance to chlorhexidine increased among clinically-relevant bacteria? A systematic review of time course and subpopulation data. PLoS One. 2021;16(8):e0256336. [DOI:10.1371/journal.pone.0256336]
36. Huang SS. Chlorhexidine-based decolonization to reduce healthcare-associated infections and multidrug-resistant organisms (MDROs): who, what, where, when, and why?. J Hosp Infect. 2019;103(3):235-43. [DOI:10.1016/j.jhin.2019.08.025]
37. Huang SS, Septimus E, Kleinman K, Moody J, Hickok J, Heim L, et al. Chlorhexidine versus routine bathing to prevent multidrug-resistant organisms and all-cause bloodstream infections in general medical and surgical units (ABATE Infection trial): a cluster-randomised trial. The Lancet. 2019;393(10177):1205-15. [DOI:10.1016/S0140-6736(18)32593-5]
38. Ma LZ, Wang D, Liu Y, Zhang Z, Wozniak DJ. Regulation of biofilm exopolysaccharide biosynthesis and degradation in Pseudomonas aeruginosa. Annu Rev Microbiol. 2022;76(1):413-33. [DOI:10.1146/annurev-micro-041320-111355]
39. Farhan RE, Solyman SM, Hanora AM, Azab MM. Molecular detection of different virulence factors genes harbor pslA, pelA, exoS, toxA and algD among biofilm-forming clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa. Mol Cell Biol. 2023;69(5):32-9. [DOI:10.14715/cmb/2023.69.5.6]
40. Motevasel M, Haghkhah M, Azimzadeh N. Phylogenetic Aspects of Antibiotic Resistance and Biofilm Formation of P. aeruginosa Isolated from Clinical Samples. Can J Infect Dis Med Microbiol. 2024;2024(1):6213873. [DOI:10.1155/2024/6213873]
41. Elmaraghy N, Abbadi S, Elhadidi G, Hashem A, Yousef A. Virulence genes in Pseudomonas aeruginosa strains isolated at Suez Canal University Hospitals with respect to the site of infection and antimicrobial resistance. Int J Clin Microbiol Biochem Technol. 2019;2(1):008-19. [DOI:10.29328/journal.ijcmbt.1001006]
42. Bakht M, Alizadeh SA, Rahimi S, Kazemzadeh Anari R, Rostamani M, Javadi A, et al. Phenotype and genetic determination of resistance to common disinfectants among biofilm-producing and non-producing Pseudomonas aeruginosa strains from clinical specimens in Iran. BMC Microbiol. 2022;22(1):124. [DOI:10.1186/s12866-022-02524-y]
43. Chowdhury CS, Khan JA, Khanam J, Nila SS, Ahmed S, Haque N, et al. Detection of Biocide Resistance Genes (qacE and qacΔE1) in Pseudomonas spp Isolated from Patients with CSOM at Mymensingh Medical College Hospital, Bangladesh. Mymensingh Med J. 2021;30(4):954-9.
44. Hashemi MM, Holden BS, Coburn J, Taylor MF, Weber S, Hilton B, et al. Proteomic analysis of resistance of Gram-negative bacteria to chlorhexidine and impacts on susceptibility to colistin, antimicrobial peptides, and ceragenins. Front Microbiol. 2019;10:210. [DOI:10.3389/fmicb.2019.00210]
45. Garcia RC, Rodrigues RD, Garcia EC, Rigatto MH. Comparison between Colistin and Polymyxin B in the Treatment of Bloodstream Infections Caused by Carbapenem-resistant Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii-calcoaceticus Complex. Antibiotics. 2023;12(8):1317. [DOI:10.3390/antibiotics12081317]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
