سال 17، شماره 3 - ( خرداد - تیر 1402 )
جلد 17 شماره 3 صفحات 345-339 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Nouri E, Asadpour L. Investigation of High-level Aminoglycoside Resistance in Enterococcus spp. Isolated from Caspian Horse Feces in Guilan Province, Northern Iran. Iran J Med Microbiol 2023; 17 (3) :339-345
URL: http://ijmm.ir/article-1-1963-fa.html
URL: http://ijmm.ir/article-1-1963-fa.html
نوری الهام، اسدپور لیلا. عنوان: بررسی مقاومت سطح بالا به آمینوگلیکوزیدها در انتروکوک های جدا شده از مدفوع اسب های کاسپین در استان گیلان، شمال ایران. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1402; 17 (3) :339-345
1- گروه زیست شناسی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
2- گروه زیست شناسی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران ،l.asadpour@yahoo.com
2- گروه زیست شناسی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران ،
چکیده: (1345 مشاهده)
زمینه و اهداف: با توجه به استفاده گسترده از داروهای ضد میکروبی در دامپزشکی و افزایش تولیدات دامی، به نظر می رسد خطر گسترش مقاومت آنتی بیوتیکی در جوامع انسانی بیشتر به دام و حیطه دامپزشکی مربوط می شود. در این مطالعه مقاومت آنتی‌بیوتیکی، مقاومت سطح بالا به آمینوگلیکوزیدها و فراوانی ژن‌های مرتبط با مقاومت آمینوگلیکوزیدی در بین گونه‌های انتروکوکوس بررسی شد. جدا شده از مدفوع اسب کاسپین مورد مطالعه قرار گرفت.
مواد و روش کار: در یک دوره یکساله در سال 1400، گونه های انتروکوکوس از مجموع 140 نمونه مدفوع اسب کاسپین جدا و با آزمایشات بیوشیمیایی شناسایی شدند. برای بررسی مقاومت آنتی بیوتیکی جدایه ها از روش انتشار از دیسک و تعیین حداقل غلظت مهارکننده رشد با روش براث میکرودایلوشن و برای تعیین فراوانی چهار ژن مرتبط با مقاومت به آمینوگلیکوزیدها از روش PCR استفاده شد. داده ها با استفاده از نرم افزار SPSS و آزمون کای اسکوئر مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت.
یافته ها: در مجموع 100 انتروکوکوک از نمونه های مدفوع اسب جدا شد. آزمایش حساسیت ضد باکتریایی نشان داد که 72 درصد از جدایه ها به حداقل یک آمینوگلیکوزید مورد بررسی مقاوم بودند و 38 درصد از جدایه ها فنوتیپ مقاومت سطح بالا به جنتامایسین و/یا استرپتومایسین را نشان دادند. ژن دو عملکردی aac(6')-Ie-aph(2″)-Ia شایع ترین ژن مرتبط با مقاومت بود و در 73/61 درصد (53 از 72) جدایه ها شناسایی شد. فراوانی ژن های aph (3')-IIIa، aph(2'')-Ib و ant(6)Ia به ترتیب 69/44، 48/61 و 70/83 درصد در بین جدایه های مقاوم به آمینوگلیکوزید بود. فراوانی ژن های مقاومت آمینوگلیکوزیدی در جدایه های مولد بیوفیلم بیشتر بود (P<0.05).
نتیجه‌گیری: یافته‌های ما نشان‌دهنده وجود ژن‌های متعدد کدکننده مقاومت به آمینوگلیکوزیدها در گونه‌های انتروکوکوس جدا شده از میکرو فلور طبیعی اسب در شمال ایران است و بر لزوم توجه مداوم در مورد نظارت صحیح بر استفاده از ترکیبات ضد میکروبی در دامپزشکی تاکید می‌کند.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
مقاومت پادزیستی (آنتی بیوتیکی)
دریافت: 1401/10/26 | پذیرش: 1402/2/6 | انتشار الکترونیک: 1402/4/5
دریافت: 1401/10/26 | پذیرش: 1402/2/6 | انتشار الکترونیک: 1402/4/5
فهرست منابع
1. Ohlsen K, Ternes T, Werner G, Wallner U, Löffler D, Ziebuhr W, et al. Impact of antibiotics on conjugational resistance gene transfer in Staphylococcus aureus in sewage. Environ Microbiol. 2003;5(8):711-6. [DOI:10.1046/j.1462-2920.2003.00459.x] [PMID]
2. Torres C, Alonso CA, Ruiz-Ripa L, León-Sampedro R, del Campo R, Coque TM. Antimicrobial Resistance in Enterococcus spp. of animal origin. Antimicrobial Resistance in Bacteria from Livestock and Companion Animals2018. p. 185-227. [DOI:10.1128/9781555819804.ch9]
3. Garrido AM, Gálvez A, Pulido RP. Antimicrobial resistance in enterococci. J Infect Dis Ther. 2014;2(4):1-7. [DOI:10.4172/2332-0877.1000150]
4. Magi G, Capretti R, Paoletti C, Pietrella M, Ferrante L, Biavasco F, et al. Presence of a vanA-carrying pheromone response plasmid (pBRG1) in a clinical isolate of Enterococcus faecium. Antimicrob Agents Chemother. 2003;47(5):1571-6. [DOI:10.1128/AAC.47.5.1571-1576.2003] [PMID] [PMCID]
5. Pootoolal J, Neu J, Wright GD. Glycopeptide Antibiotic Resistance. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 2002;42(1):381-408. [DOI:10.1146/annurev.pharmtox.42.091601.142813] [PMID]
6. Rahimi F, Talebi M, Saifi M, Pourshafie MR. Distribution of enterococcal species and detection of vancomycin resistance genes by multiplex PCR in Tehran sewage. Iran Biomed J. 2007;11(3):161-7.
7. Talebi M, Sadeghi J, Rahimi F, Pourshafie MR. Isolation and Biochemical Fingerprinting of Vancomycin-Resistant Enterococcus faecium From Meat, Chicken and Cheese. Jundishapur J Microbiol. 2015;8(4):e15815. [DOI:10.5812/jjm.8(4)2015.15815]
8. Kalantari H, Hajizade A, Issazadeh K, Faezi Ghasemi M. A Study on the Prevalence of Vancomycin-resistant Enterococci and Their Antibiotic Resistance Pattern in Recreational Waters in Guilan Province, Iran. Iran J Med Microbiol. 2022;16(3):251-8. [DOI:10.30699/ijmm.16.3.251]
9. Elahi Y, Javdani Shahedin G, Nejati A, Ashrafi I, Asadian M, Mazaheri Nezhad Fard R. Whole-Genome Sequencing of a Clinically Isolated Antibiotic-Resistant Enterococcus faecium EntfacYE. Iran J Med Microbiol. 2021;15(6):692-9. [DOI:10.30699/ijmm.15.6.692]
10. Eisner A, Feierl G, Gorkiewicz G, Dieber F, Kessler HH, Marth E, et al. High Prevalence of VanA-Type Vancomycin-Resistant Enterococci in Austrian Poultry. Appl Environ Microbiol. 2005;71(10):6407-9. [DOI:10.1128/AEM.71.10.6407-6409.2005] [PMID] [PMCID]
11. García-Solache M, Rice LB. The Enterococcus: a Model of Adaptability to Its Environment. Clin Microbiol Rev. 2019;32(2):e00058-18. [DOI:10.1128/CMR.00058-18] [PMID] [PMCID]
12. Hammerum AM. Enterococci of animal origin and their significance for public health. Clin Microbiol Infect. 2012;18(7):619-25. [DOI:10.1111/j.1469-0691.2012.03829.x] [PMID]
13. Zaheer R, Cook SR, Barbieri R, Goji N, Cameron A, Petkau A, et al. Surveillance of Enterococcus spp. reveals distinct species and antimicrobial resistance diversity across a One-Health continuum. Sci Rep. 2020;10(1):3937.
https://doi.org/10.1038/s41598-020-69044-5 [DOI:10.1038/s41598-020-61002-5]
14. Raina D, Negi A, Pandita A, Rawat N. Prevalence of high- level aminoglycoside resistance and vancomycin resistance in Enterococcal isolates at a tertiary care hospital. Iran J Med Microbiol. 2022;16(5):472-8. [DOI:10.30699/ijmm.16.5.472]
15. Bismuth R, Courvalin P. Aminoglycosides and Gram-positive bacteria. ESKA, Portland, Oregon. 3 ed: USA; 2010. p. 225-42.
16. Donabedian SM, Thal LA, Hershberger E, Perri MB, Chow JW, Bartlett P, et al. Molecular Characterization of Gentamicin-Resistant Enterococci in the United States: Evidence of Spread from Animals to Humans through Food. J Clin Microbiol. 2003;41(3):1109-13. [DOI:10.1128/JCM.41.3.1109-1113.2003] [PMID] [PMCID]
17. Jaimee G, Halami PM. High level aminoglycoside resistance in Enterococcus, Pediococcus and Lactobacillus species from farm animals and commercial meat products. Ann Microbiol. 2016;66:101-10. [DOI:10.1007/s13213-015-1086-1]
18. Jackson CR, Fedorka-Cray PJ, Barrett JB, Ladely SR. Genetic Relatedness of High-Level Aminoglycoside-Resistant Enterococci Isolated from Poultry Carcasses. Avian Dis. 2004;48(1):100-7. [DOI:10.1637/7071] [PMID]
19. Jackson CR, Lombard JE, Dargatz DA, Fedorka-Cray PJ. Prevalence, species distribution and antimicrobial resistance of enterococci isolated from US dairy cattle. Lett Appl Microbiol. 2011;52(1):41-8. [DOI:10.1111/j.1472-765X.2010.02964.x] [PMID]
20. Klibi N, Aouini R, Borgo F, Ben Said L, Ferrario C, Dziri R, et al. Antibiotic resistance and virulence of faecal enterococci isolated from food-producing animals in Tunisia. Ann Microbiol. 2015;65(2):695-702. [DOI:10.1007/s13213-014-0908-x]
21. Ramos S, Igrejas G, Capelo-Martinez J-L, Poeta P. Antibiotic resistance and mechanisms implicated in fecal enterococci recovered from pigs, cattle and sheep in a Portuguese slaughterhouse. Ann Microbiol. 2012;62(4):1485-94. [DOI:10.1007/s13213-011-0402-7]
22. Kim DH, Chung YS, Park YK, Yang S-J, kyung Lim S, Park YH, et al. Antimicrobial resistance and virulence profiles of Enterococcus spp. isolated from horses in Korea. Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 2016;48:6-13. [DOI:10.1016/j.cimid.2016.07.001] [PMID]
23. Beard LA. Multiple drug resistant bacteria in equine medicine: An emerging problem. Equine Vet Educ. 2010;22(6):287-9. [DOI:10.1111/j.2042-3292.2010.00067.x]
24. Damborg P, Marskar P, Baptiste KE, Guardabassi L. Faecal shedding of CTX-M-producing Escherichia coli in horses receiving broad-spectrum antimicrobial prophylaxis after hospital admission. Vet Microbiol. 2012;154(3-4):298-304. [DOI:10.1016/j.vetmic.2011.07.005] [PMID]
25. Wolny-Koładka K, Lenart-Boroń A. Antimicrobial resistance and the presence of extended-spectrum beta-lactamase genes in Escherichia coli isolated from the environment of horse riding centers. Environ Sci Pollut Res Int. 2018;25(22):21789-800. [DOI:10.1007/s11356-018-2274-x] [PMID] [PMCID]
26. Stępień-Pyśniak D, Bertelloni F, Dec M, Cagnoli G, Pietras-Ożga D, Urban-Chmiel R, et al. Characterization and comparison of Enterococcus spp. isolates from feces of healthy dogs and urine of dogs with UTIs. Animals. 2021;11(10):2845. [DOI:10.3390/ani11102845] [PMID] [PMCID]
27. Sajjadi N, Piranfar V, Mirnejad R. Identification of streptomycin resistance gene among Enterococcus spp. isolated from hospitals of Tehran by PCR. Iran J Med Microbiol. 2016;10(6):60-5.
28. Salehi M, Hatami Z. Molecular Occurrence of Enterocin A Gene among Enterococcus faecium Strains Isolated from Gastro-Intestinal Tract and Antimicrobial Effect of this Bacteriocin Against Clinical Pathogens. Iran J Med Microbiol. 2014;8(1):18-26.
29. Hemalatha G, Bhaskaran K, Sowmiya M, Anusheela Howlader SK. A study on virulence factors and antimicrobial resistance pattern among enterococci isolated from various clinical specimens from a tertiary care hospital. J Res Med Sci. 2017;5(7):2969-74. [DOI:10.18203/2320-6012.ijrms20172971]
30. Hershberger E, Oprea SF, Donabedian SM, Perri M, Bozigar P, Bartlett P, et al. Epidemiology of antimicrobial resistance in enterococci of animal origin. J Antimicrob Chemother. 2005;55(1):127-30. [DOI:10.1093/jac/dkh508] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
