سال 17، شماره 6 - ( آذر - دی 1402 )
جلد 17 شماره 6 صفحات 686-680 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Basheer Bahedh S, Yousif Mohammed D. Detection of Biologically Active Compounds in Eriobotrya japonica L. Seeds Extract and Determination of Their Effectiveness Against Dermatophytes. Iran J Med Microbiol 2023; 17 (6) :680-686
URL: http://ijmm.ir/article-1-1769-fa.html
URL: http://ijmm.ir/article-1-1769-fa.html
بشیر بهد شهاد، یوسف محمد دینا. تشخیص ترکیبات فعال بیولوژیکی در عصاره دانه های Eriobotrya japonica L. و تعیین اثربخشی آنها در برابر درماتوفیت ها. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1402; 17 (6) :680-686
1- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه مستنصریه، بغداد، عراق ، shahadbasheer92@gmail.com
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه مستنصریه، بغداد، عراق
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه مستنصریه، بغداد، عراق
چکیده: (616 مشاهده)
زمینه و اهداف: درمان موثر درماتوفیتوز نیازمند مصرف آنتی بیوتیک است که می تواند به سلامت بدن آسیب برساند. هدف این مطالعه مرور سیستماتیک ارزیابی حساسیت درماتوفیت ها به عصاره های گیاهی و رسیدگی به این شکاف مهم در درک مقاومت و درمان درماتوفیت ها است.
مواد و روش کار: دانه‌های Eriobotrya japonica جمع‌آوری، آسیاب و استخراج شد و سپس آنالیز GC-MS برای شناسایی ترکیبات ثانویه انجام شد. سپس تیمارهای عصاره گیاهی (اتانول) در غلظت (۳۰۰، ۱۵۰ و ۷۵ میلی‌گرم در میلی‌لیتر) با تیمار شاهد (-) و تیمار شاهد (+) حاوی یک ضد قارچ دارویی (نیستاتین) برای درمان آن ساخته شد. درماتوفیت ها و نشان دهنده میزان مهار برای هر ایزوله از درماتوفیت ها (Trichophyton rubrum، Trichophyton mentographytes، Microsporum canis، Trichophyton verrucosum، Trichophyton quinckeanum، Epidermophyton، Trichophyton simii، Trichophyton interdigitale و Fusarium).
یافته ها: عصاره بذر رشد درماتوفیت‌ها را در غلظت ۳۰۰ میلی‌گرم بر میلی‌لیتر با درصد بازداری از ۱۰۰ درصد تا ۹۶/۵۶ درصد در مقایسه با غلظت‌های ۱۵۰ و ۷۵ میلی‌گرم در میلی‌لیتر، با درصد بازداری از ۹۷/۲۷ درصد تا ۸۶/۶۶ درصد، به‌طور معنی‌داری مهار کرد. و به ترتیب از ۹۳/۶۶ درصد به ۷۹/۸۴ درصد رسید. نتایج تجزیه و تحلیل GC-MS نشان داد که عصاره اتانولی دانه لوکوت دارای ترکیبات شیمیایی فعال فراوانی از جمله بیست و پنج ترکیب گیاهی است که در عصاره دانه با E. japonica L متمایز می شود. علاوه بر این، درصد سطح بالایی نیز دارد. در هر عصاره پروپیلن گلیکول مونولئات ۵/۰۳ درصد، D-Mannitol یا DL-Glucitol ۵/۶۷ درصد، بتا سیتوسترول ۵/۷۰ درصد، n-هگزادکانوئیک اسید ۱۴/۵۳ درصد و ۹، ۱۲-Octadecadienoic اسید (Z, Z) - ۲۲/۸۵ درصد بود.
نتیجه‌گیری: بر اساس نتایج بدست آمده، عصاره اتانولی گیاه لوکوتا به میزان قابل‌توجهی در مهار رشد بیشتر درماتوفیت‌ها مؤثر بود، اما جنس فوزاریوم از حساسیت کمتری برخوردار بود. این در انتخاب عصاره های گیاهی در درمان درماتوفیت ها مفید است که اهمیت آنها و حاوی ترکیبات فعال مفید آنها را تایید می کند.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
قارچ شناسی پزشکی
دریافت: 1402/6/28 | پذیرش: 1402/10/25 | انتشار الکترونیک: 1407/11/10
دریافت: 1402/6/28 | پذیرش: 1402/10/25 | انتشار الکترونیک: 1407/11/10
فهرست منابع
1. AL-Khikani FH. Dermatophytosis a worldwide contiguous fungal infection: Growing challenge and few solutions. Biomed Biotechnol Res J. 2020;4(2):117-22. [DOI:10.4103/bbrj.bbrj_1_20]
2. Al-Janabi AA. Dermatophytosis: Causes, clinical features, signs and treatment. J Symptoms Signs. 2014;3(3):200-3.
3. Mei A, Ricciardo B, Raby E, Kumarasinghe SP. Plant-based therapies for dermatophyte infections. Tasman Med J. 2022;4(3):21-37.
4. Al-Ghazali NA, Hameed ZL, Abu-Duka AB. First Report of Aspergillus Leaf Spot on Loquat (Eriobotrya japonica) Caused by Aspergillus fumigatus in Iraq. In IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. IOP Publishing. 2023;1158(4):042030. [DOI:10.1088/1755-1315/1158/4/042030]
5. Jian T, Chen J, Ding X, Lv H, Li J, Wu Y, et al. Flavonoids isolated from loquat (Eriobotrya japonica) leaves inhibit oxidative stress and inflammation induced by cigarette smoke in COPD mice: the role of TRPV1 signaling pathways. Food Funct. 2020;11(4):3516-26. [DOI:10.1039/C9FO02921D] [PMID]
6. Henmi A, Shoji M, Nomura M, Inoue T. Fatty acid composition and applications of Eriobotrya japonica seed oil. J Oleo Sci. 2019;68(7):599-606. [DOI:10.5650/jos.ess18178] [PMID]
7. Inoue M, Hayashi S, Craker L. Culture, history, and applications of medicinal and aromatic plants in Japan. In Aromatic and Medicinal Plants-Back to Nature. Intechopen Publishing. 2017:95-110. [DOI:10.5772/66505]
8. Cornejal N, Pollack E, Kaur R, Persaud A, Plagianos M, Juliani HR, et al. Antimicrobial and Antioxidant Properties of Theobroma cacao, Bourreria huanita, Eriobotrya japonica, and Elettaria cardamomum-Traditional Plants Used in Central America. J Med Act Plants. 2023;12(1):1-17.
9. Liu Y, Zhang W, Xu C, Li X. Biological activities of extracts from loquat (Eriobotrya japonica Lindl.): a review. Int J Mol Sci. 2016;17(12):1983. [DOI:10.3390/ijms17121983] [PMID] [PMCID]
10. Rashed KN, Butnariu M. Isolation and antimicrobial and antioxidant evaluation of bio-active compounds from Eriobotrya japonica stems. Adv Pharm Bull. 2014;4(1):75-81.
11. Abubakar AR, Haque M. Preparation of medicinal plants: Basic extraction and fractionation procedures for experimental purposes. J Pharm Bioallied Sci. 2020;12(1):1-10. [DOI:10.4103/jpbs.JPBS_175_19] [PMID] [PMCID]
12. Eswaran R, Anandan A, Doss A, Sangeetha G, Anand SP. Analysis of chemical composition of Cissus quadrangularis linn by GC-MS. Asian J Pharm Clin Res. 2012;5(Supple 2):139-40.
13. Wang SY, Wu CL, Chu FH, Chien SC, Kuo YH, Shyur LF, et al. Chemical composition and antifungal activity of essential oil isolated from Chamaecyparis formosensis Matsum. wood. Holzforschung. 2005;59(3):295-9. [DOI:10.1515/HF.2005.049]
14. Abdu B. Comparative study of antimicrobial potentials of seed oils of jatropha curcas and Tamarindus indica. Int J Sci Res Sci Eng Technol. 2019;6(5):29-36.
15. Mehdi MA, Alawi AH, Thabet AZ, Alarabi F, Omar GM, Pradhan V. Analysis of bioactive chemical compounds of leaves extracts from Tamarindus indica using FT-IR and GC-MS spectroscopy. Asian J Res Biochem. 2021;8(1):22-34. [DOI:10.9734/ajrb/2021/v8i130171]
16. Fagbemi KO, Aina DA, Olajuyigbe OO. Soxhlet extraction versus hydrodistillation using the clevenger apparatus: A comparative study on the extraction of a volatile compound from Tamarindus indica seeds. Sci World J. 2021;2021:1-8. [DOI:10.1155/2021/5961586] [PMID] [PMCID]
17. Khidir A, Abdel Karim M. Constituents and Antimicrobial Activity of Oil from Withania somnifera Grown in Sudan. J Faculty Sci Technol. 2022;9 (2):117-24.
18. Cui K, He L, Cui G, Zhang T, Chen Y, Zhang T, et al. Biological activity of trans-2-hexenal against the storage insect pest Tribolium castaneum (Coleoptera: Tenebrionidae) and mycotoxigenic storage fungi. J Econ Entomol. 2021;114(2):979-87. [DOI:10.1093/jee/toab001] [PMID]
19. Neto LJ, Ramos AG, Freitas TS, Barbosa CR, de Sousa Júnior DL, Siyadatpanah A, et al. Evaluation of benzaldehyde as an antibiotic modulator and its toxic effect against Drosophila melanogaster. Molecules. 2021;26(18):5570. [DOI:10.3390/molecules26185570] [PMID] [PMCID]
20. Ogala JB, Hassan Y, Samaila A, Bindawa MI, TOK TT. Synthesis, antifungal activity and in silico ADMET studies of benzyl alcohol derivatives. İstanbul J Pharm. 2022;52(1):47-53. [DOI:10.26650/IstanbulJPharm.2022.958484]
21. Mahdavi SM, Habibi A, Dolati H, Shahcheragh SM, Sardari S, Azerang P. Synthesis and antimicrobial evaluation of 4H-pyrans and schiff bases fused 4H-pyran derivatives as inhibitors of Mycobacterium bovis (BCG). Iran J Pharm Res. 2018;17(4):1229-39.
22. Joye, IJ. Acids and Bases in Food. Editor(s): Laurence Melton, Fereidoon Shahidi, Peter Varelis, Encyclopedia of Food Chemistry. Academic Press. 2019:1-9. [DOI:10.1016/B978-0-08-100596-5.21582-5] [PMID]
23. Abdou A, Elmakssoudi A, El Amrani A, JamalEddine J, Dakir M. Recent advances in chemical reactivity and biological activities of eugenol derivatives. Med Chem Res. 2021;30:1011-30. [DOI:10.1007/s00044-021-02712-x]
24. Kim J, Kim YY, Chang JY, Kho HS. Candidacidal activity of xylitol and sorbitol. J Oral Med Pain. 2016;41(4):155-60.
https://doi.org/10.14476/jomp.2016.41.4.155 [DOI:10.14476/jomp.2021.46.4.155]
25. Shobi T, Viswanathan M. Antibacterial activity of di-butyl phthalate isolated from Begonia malabarica. J Appl Biol Biotechnol. 2018;5(2):97-100. [DOI:10.15406/jabb.2018.05.00123]
26. Lima R, Fernandes C, Pinto MM. Molecular modifications, biological activities, and applications of chitosan and derivatives: A recent update. Chirality. 2022;34(9):1166-90. [DOI:10.1002/chir.23477] [PMID]
27. Huang L, Zhu X, Zhou S, Cheng Z, Shi K, Zhang C, et al. Phthalic acid esters: Natural sources and biological activities. Toxins. 2021;13(7):495. [DOI:10.3390/toxins13070495] [PMID] [PMCID]
28. Sbihi HM, Nehdi IA, Mokbli S, Romdhani-Younes M, Al-Resayes SI. Hexane and ethanol extracted seed oils and leaf essential compositions from two castor plant (Ricinus communis L.) varieties. Ind Crops Prod. 2018;122:174-81. [DOI:10.1016/j.indcrop.2018.05.072]
29. Castejón N, Luna P, Señoráns FJ. Alternative oil extraction methods from Echium plantagineum L. seeds using advanced techniques and green solvents. Food Chem. 2018;244:75-82. [DOI:10.1016/j.foodchem.2017.10.014] [PMID]
30. Adham D, Taufiqurrahman I, Helmi ZN. Flavonoid level analysis of Binjai leaf extract (Mangifera caesia) in ethanol, methanol, and n-hexane solvents. 2019;4(1):46-9.
31. Scheibler E, Garcia MC, Medina da Silva R, Figueiredo MA, Salum FG, Cherubini K. Use of nystatin and chlorhexidine in oral medicine: Properties, indications and pitfalls with focus on geriatric patients. Gerodontology. 2017;34(3):291-8. [DOI:10.1111/ger.12278] [PMID]
32. Muraih JK, Arean AG, Abdulabass HT. Phytochemical and antibacterial activity of Capparis spinosa roots extracts against some pathogenic bacteria. Ann Trop Med Public Health. 2020;23(S10):SP231010. [DOI:10.36295/ASRO.2020.231010]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
