سال ۱۶، شماره ۵ - ( مهر - آبان ۱۴۰۱ )
جلد ۱۶ شماره ۵ صفحات ۴۱۱-۴۰۵ |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Akbari P, Asadpour L. An Evaluation of Antimicrobial Resistance and Virulence Potential of Escherichia coli Obtained from Feces of Ornamental Birds in Guilan, Iran. Iran J Med Microbiol 2022; 16 (5) :405-411
URL: http://ijmm.ir/article-1-1572-fa.html
URL: http://ijmm.ir/article-1-1572-fa.html
اکبری پرستو، اسدپور لیلا. بررسی مقاومت های آنتی بیوتیکی و حدت اشرشیاکلی های جدا شده از مدفوع پرندگان زینتی در گیلان. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. ۱۴۰۱; ۱۶ (۵) :۴۰۵-۴۱۱
۱- گروه زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد رشت، رشت، ایران
۲- گروه زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد رشت، رشت، ایران ،asadpour@iaurasht.ac.ir
۲- گروه زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد رشت، رشت، ایران ،
چکیده: (۲۲۴۰ مشاهده)
زمینه و اهداف: پرندگان زینتی می توانند به عنوان مخزنی برای اشریشیا کلی های حاد و دارای ژن های مقاومت آنتی بیوتیکی عمل کنند و در انتقال این سویه ها به انسان نقش داشته باشند. داشتن اطلاعات از وضعیت مقاومت داروئی و حدت باکتری های جدا شده از پرندگان زینتی در درمـان و یا پیشگیری از انتقال عوامل بیمازیزا به انسان ضروری به نظر می رسد. هدف از این مطالعه، بررسی الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی و حدت اشرشیاکلی های جدا شده از پرندگان زینتی در گیلان می باشد.
مواد و روش کار: جدایه های اشرشیا کلی از مدفوع ۸۰ پرنده زینتی به ظاهر سالم در رشت جداسازی و با کشت و انجام تست های بیوشیمیایی شناسایی شد. الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی به روش انتشاز از دیسک و فراوانی ژن های حدت به روش PCR در جدایه ها بررسی شد.
یافته ها: در مجموع ۳۲ جدایه E. coli از مدفوع تازه پرندگان زینتی جداسازی شد. در این بررسی ۱۴ جدایه (۴۳/۷۵ درصد) دارای مقاومت چندگانه دارویی و یک جدایه مولد بتالاکتاماز وسیع الطیف بود. بیشترین میزان حساسیت جدایه ها به جنتامایسین (۹۰ درصد) و بیشترین میزان مقاومت جدایه ها نسبت به پنی سیلین (۹۰ درصد) بود. فراوانی ژن های iroN، ompT، hlyF، iss و iutA در جدایه های مدفوعی پرندگان زینتی به ترتیب ۲۸/۱۲، ۴۳/۳۷، ۴۰/۶۲، ۳۰ و ۴۳/۷۵ درصد بود و ۲۵ درصد جدایه ها بعنوان اشرشیا کلی های بیماریزای پرندگان شناسایی شد.
نتیجه‌گیری: نتایج این مطالعه بیانگر پتانسیل حدت و مقاومت های دارویی در جدایه های مدفوعی اشرشیا کلی در پرندگان زینتی در رشت می باشد. انتشار این سویه ها در محیط می تواند سلامت صاحبان و بهداشت عمومی را به مخاطره اندازد.
مواد و روش کار: جدایه های اشرشیا کلی از مدفوع ۸۰ پرنده زینتی به ظاهر سالم در رشت جداسازی و با کشت و انجام تست های بیوشیمیایی شناسایی شد. الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی به روش انتشاز از دیسک و فراوانی ژن های حدت به روش PCR در جدایه ها بررسی شد.
یافته ها: در مجموع ۳۲ جدایه E. coli از مدفوع تازه پرندگان زینتی جداسازی شد. در این بررسی ۱۴ جدایه (۴۳/۷۵ درصد) دارای مقاومت چندگانه دارویی و یک جدایه مولد بتالاکتاماز وسیع الطیف بود. بیشترین میزان حساسیت جدایه ها به جنتامایسین (۹۰ درصد) و بیشترین میزان مقاومت جدایه ها نسبت به پنی سیلین (۹۰ درصد) بود. فراوانی ژن های iroN، ompT، hlyF، iss و iutA در جدایه های مدفوعی پرندگان زینتی به ترتیب ۲۸/۱۲، ۴۳/۳۷، ۴۰/۶۲، ۳۰ و ۴۳/۷۵ درصد بود و ۲۵ درصد جدایه ها بعنوان اشرشیا کلی های بیماریزای پرندگان شناسایی شد.
نتیجه‌گیری: نتایج این مطالعه بیانگر پتانسیل حدت و مقاومت های دارویی در جدایه های مدفوعی اشرشیا کلی در پرندگان زینتی در رشت می باشد. انتشار این سویه ها در محیط می تواند سلامت صاحبان و بهداشت عمومی را به مخاطره اندازد.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
باکتری شناسی پزشکی
دریافت: 1400/9/11 | پذیرش: 1401/2/28 | انتشار الکترونیک: 1401/5/17
دریافت: 1400/9/11 | پذیرش: 1401/2/28 | انتشار الکترونیک: 1401/5/17
فهرست منابع
1. Pontes PSd, Coutinho SDA, Iovine RdO, Cunha MPV, Knöbl T, Carvalho VMd. Survey on pathogenic Escherichia coli and Salmonella spp. in captive cockatiels (Nymphicus hollandicus). Braz J Microbiol. 2018;49:76-82. [DOI:10.1016/j.bjm.2018.05.003] [PMID] [PMCID]
2. Sigirci BD, Celik B, Halac B, Adiguzel MC, Kekec I, Metiner K, et al. Antimicrobial resistance profiles of Escherichia coli isolated from companion birds. J King Saud Univ Sci. 2020;32(1):1069-73. [DOI:10.1016/j.jksus.2019.09.014]
3. Krauss H, Weber A, Appel M, Enders B, Isenberg HD, Schiefer HG, et al. Zoonoses: infectious diseases transmissible from animals to humans: ASM press Washington, DC; 2003. [DOI:10.1128/9781555817787]
4. Li Y, Chen L, Wu X, Huo S. Molecular characterization of multidrug-resistant avian pathogenicEscherichia coli isolated from septicemic broilers. Poult Sci. 2015;94(4):601-11. [DOI:10.3382/ps/pev008] [PMID]
5. Guerra PR, Herrero-Fresno A, Pors SE, Ahmed S, Wang D, Thøfner I, et al. The membrane transporter PotE is required for virulence in avian pathogenic Escherichia coli (APEC). Vet Microbiol. 2018;216:38-44. [DOI:10.1016/j.vetmic.2018.01.011] [PMID]
6. Sarowska J, Futoma-Koloch B, Jama-Kmiecik A, Frej-Madrzak M, Ksiazczyk M, Bugla-Ploskonska G, et al. Virulence factors, prevalence and potential transmission of extraintestinal pathogenic Escherichia coli isolated from different sources: recent reports. Gut pathogens. 2019;11(1):1-16. [DOI:10.1186/s13099-019-0290-0] [PMID] [PMCID]
7. Skyberg JA, Johnson TJ, Johnson JR, Clabots C, Logue CM, Nolan LK. Acquisition of avian pathogenic Escherichia coli plasmids by a commensal E. coli isolate enhances its abilities to kill chicken embryos, grow in human urine, and colonize the murine kidney. Infect Immun. 2006;74(11):6287-92. [DOI:10.1128/IAI.00363-06] [PMID] [PMCID]
8. Johnson TJ, Wannemuehler Y, Doetkott C, Johnson SJ, Rosenberger SC, Nolan LK. Identification of minimal predictors of avian pathogenic Escherichia coli virulence for use as a rapid diagnostic tool. J Clin Microbiol. 2008;46(12):3987-96. [DOI:10.1128/JCM.00816-08] [PMID] [PMCID]
9. De Carli S, Ikuta N, Lehmann FKM, da Silveira VP, de Melo Predebon G, Fonseca ASK, et al. Virulence gene content in Escherichia coli isolates from poultry flocks with clinical signs of colibacillosis in Brazil. Poult Sci. 2015;94(11):2635-40. [DOI:10.3382/ps/pev256] [PMID]
10. Xu J, Wu B, Wang J-H, Huang L, Wang D-y, Zhao L, et al. Pre-existing mutations in reverse transcriptase of hepatitis B virus in treatment-naive Chinese patients with chronic hepatitis B. PLoS One. 2015;10(3): e0117429. [DOI:10.1371/journal.pone.0117429] [PMID] [PMCID]
11. Murase K, Martin P, Porcheron G, Houle S, Helloin E, Pénary M, et al. HlyF produced by extraintestinal pathogenic Escherichia coli is a virulence factor that regulates outer membrane vesicle biogenesis. J Infect Dis. 2016;213(5):856-65. [DOI:10.1093/infdis/jiv506] [PMID]
12. Rashki A, Abdi HA, Shookohi M. Prevalence of genes encoding outer membrane virulence factors among fecal Escherichia coli isolates. Int J Basic Sci Med. 2017;2(1):52-7. [DOI:10.15171/ijbsm.2017.11]
13. Bush K. Extended‐spectrum β‐lactamases in North America, 1987-2006. Clin Microbiol Infect. 2008;14:134-43. [DOI:10.1111/j.1469-0691.2007.01848.x] [PMID]
14. Cantón R, Novais A, Valverde A, Machado E, Peixe L, Baquero F, et al. Prevalence and spread of extended‐spectrum β‐lactamase‐producing Enterobacteriaceae in Europe. Clin Microbiol Infect. 2008;14:144-53. [DOI:10.1111/j.1469-0691.2007.01850.x] [PMID]
15. Hawkey P. Prevalence and clonality of extended‐spectrum β‐lactamases in Asia. Clin Microbiol Infect. 2008;14:159-65. [DOI:10.1111/j.1469-0691.2007.01855.x] [PMID]
16. Sørum H, Sunde M. Resistance to antibiotics in the normal flora of animals. Vet Res. 2001;32(3-4):227-41. [DOI:10.1051/vetres:2001121] [PMID]
17. Bonnet R. Growing group of extended-spectrum β-lactamases: the CTX-M enzymes. Antimicrob Agents Chemother. 2004;48(1):1-14. [DOI:10.1128/AAC.48.1.1-14.2004] [PMID] [PMCID]
18. Tahmasby H, Barati S, Momtaz H, Rafiee Dolatabadi M, Ghasemi M, Ahmadi Salianeh V, et al. An Investigation of beta-lactam antibiotics resistance in Escherichia coli isolates and molecular detection of Escherichia coli O157: H7 in cage birds from Shahrekord, Iran. BJM. 2014;3(9):35-44.
19. Wayne PA. Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. Inform Suppl. 2011;31(1):100-21.
20. Machado D, Lopes E, Albuquerque A, Horn R, Bezerra W, Siqueira R, et al. Isolation and antimicrobial resistance profiles of enterobacteria from nestling grey-breasted parakeets (Pyrrhura griseipectus). BRAZ J POULTRY SCI. 2018;20:103-10. [DOI:10.1590/1806-9061-2017-0551]
21. Beleza AJF, Maciel WC, Carreira AS, Bezerra WG, Carmo CC, Havt A, et al. Detection of Enterobacteriaceae, antimicrobial susceptibility, and virulence genes of Escherichia coli in canaries (Serinus canaria) in northeastern Brazil. Pesqui Vet Bras. 2019;39:201-8. [DOI:10.1590/1678-5150-pvb-5829]
22. Giacopello C, Foti M, Fisichella V, Piccolo FL. Antibiotic-resistance patterns of Gram-negative bacterial isolates from breeder canaries (Serinus canaria domestica) with clinical disease. J Exot Pet Med. 2015;24(1):84-91. [DOI:10.1053/j.jepm.2014.12.009]
23. Aşkar Ş, Sakarya F, Yıldırım M. The potential risk in epizootiology of bacterial zoonozis: Pigeon (Columba livia domestica) feces. Kafkas Univ Vet Fak Derg. 2011;17(Suppl A):S13-S6.
24. Dolejska M, Cizek A, Literak I. High prevalence of antimicrobial‐resistant genes and integrons in Escherichia coli isolates from black‐headed gulls in the Czech Republic. J Appl Microbiol. 2007;103(1):11-9. [DOI:10.1111/j.1365-2672.2006.03241.x] [PMID]
25. Dolejska M, Bierošová B, Kohoutova L, Literak I, Čížek A. Antibiotic‐resistant Salmonella and Escherichia coli isolates with integrons and extended‐spectrum beta‐lactamases in surface water and sympatric black‐headed gulls. J Appl Microbiol. 2009;106(6):1941-50. [DOI:10.1111/j.1365-2672.2009.04155.x] [PMID]
26. Silva VL, Nicoli JR, Nascimento TC, Diniz CG. Diarrheagenic Escherichia coli strains recovered from urban pigeons (Columba livia) in Brazil and their antimicrobial susceptibility patterns. Curr Microbiol. 2009;59(3):302-8. [DOI:10.1007/s00284-009-9434-7] [PMID]
27. Radimersky T, Frolkova P, Janoszowská D, Dolejská M, Svec P, Roubalová E, et al. Antibiotic resistance in faecal bacteria (Escherichia coli, Enterococcus spp.) in feral pigeons. J Appl Microbiol. 2010;109(5):1687-95. [DOI:10.1111/j.1365-2672.2010.04797.x] [PMID]
28. Dolejska M, Duskova E, Rybarikova J, Janoszowska D, Roubalova E, Dibdakova K, et al. Plasmids carrying bla CTX-M-1 and qnr genes in Escherichia coli isolates from an equine clinic and a horseback riding centre. J Antimicrob Chemother. 2011;66(4):757-64. [DOI:10.1093/jac/dkq500] [PMID]
29. Bonnedahl J, Drobni M, Gauthier-Clerc M, Hernandez J, Granholm S, Kayser Y, et al. Dissemination of Escherichia coli with CTX-M type ESBL between humans and yellow-legged gulls in the south of France. PloS one. 2009;4(6):e5958. [DOI:10.1371/journal.pone.0005958] [PMID] [PMCID]
30. Mohammadzadeh A, Mahmoodi P, Tamai I, Sharifi A. Molecular analysis of virulence genes stx1, stx2, eaeA and hlyA in Escherichia coli isolated from cloacal samples in wild pigeons (Columba livia) and determination of their antibiotic resistance. J Vet Res. 2017;72(2).
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
