سال 15، شماره 6 - ( آذر - دی 1400 )
جلد 15 شماره 6 صفحات 683-676 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Dalir A, Razavi S, Talebi M, Masjedian Jazi F, Zahedi Bialvaei A, Mirshekar M et al . Antibiotic Susceptibility Pattern and Distribution of Virulence Factors Among Klebsiella pneumoniae Isolated from Healthy Volunteers. Iran J Med Microbiol 2021; 15 (6) :676-683
URL: http://ijmm.ir/article-1-1482-fa.html
URL: http://ijmm.ir/article-1-1482-fa.html
دلیر امینه، رضوی شبنم، طالبی ملیحه، مسجدیان جزی فرامرز، زاهدی بیالوائی عابد، میرشکار مریم و همکاران.. الگوی حساسیت آنتی بیوتیکی و بررسی فاکتورهای بیماری زایی کلبسیلا پنومونیه جدا شده از داوطلبان سالم. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1400; 15 (6) :676-683
امینه دلیر1 
، شبنم رضوی 
2، ملیحه طالبی1 ، فرامرز مسجدیان جزی1 ، عابد زاهدی بیالوائی3 ، مریم میرشکار1 ، وحید لهراسبی1
، شبنم رضوی 2، ملیحه طالبی1 ، فرامرز مسجدیان جزی1 ، عابد زاهدی بیالوائی3 ، مریم میرشکار1 ، وحید لهراسبی1
1- گروه میکروب شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران
2- گروه میکروب شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران ،razavi.sh@iums.ac.ir
3- مرکز تحقیقات بیوتکنولوژی میکروبی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران
2- گروه میکروب شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران ،
3- مرکز تحقیقات بیوتکنولوژی میکروبی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران
چکیده: (4598 مشاهده)
زمینه و اهداف: فلور مدفوعی افراد سالم در جامعه مخزن بالقوه عفونی بزرگی است. مطالعه حاضر با هدف شناسایی الگوهای مقاومت آنتی بیوتیکی و فاکتورهای بیماری زایی کلبسیلا پنومونیه جدا شده از مدفوع داوطلبان سالم انجام شد.
مواد و روش کار: سیصد و پنجاه نمونه مدفوع از افراد سالم نمایندگان فروشگاهی مراجعه کننده به مراکز بهداشتی درمانی شمال غرب تهران جهت دریافت کارت سلامت جمع آوری شد. جداسازی باکتری، شناسایی و تست حساسیت ضد میکروبی طبق دستورالعمل های معمول انجام شد. علاوه بر این، واکنش زنجیره ای پلیمراز (PCR) برای شناسایی عوامل ژنتیکی مسئول تولید بتالاکتامازهای وسیع الطیف (ESBLs: SHV، TEM، و CTX-M)، blaKPC و سایر ژن های حدت استفاده شد.
یافته ها: از بین نمونه‌های مدفوع مورد بررسی، ۶۰ (۱۷.۱%) کلبسیلا پنومونیه جدا شد. نتایج نشان داد که بیشترین میزان مقاومت مربوط به پیپراسیلین تازوباکتام (n=۲۵، ۴۱.۶%)، و مروپنم (n=۱۷، ۲۸.۸%) و کوتریموکسازول (n=۱۱، ۱۸.۳%) بود. همچنین تمامی سویه ها به آمیکاسین، جنتامایسین و ایمی پنم حساس بودند. نتایج PCR ژن های بیماریزایی نشان داد که ۹۵ درصد (۵۷ نفر) جدایه ها برای ژن fimH، ۹۳/۳۳ درصد (۵۶=n) برای ژن BssS، ۴۵ درصد (۲۷=n) برای ژن rmpA مثبت بودند. نتایج PCR برای ژن‌های مقاومت آنتی‌بیوتیکی نشان داد که ۴۱/۶۶ درصد (۲۵=n) دارای ژن blaTEM، ۳۸/۳۳ درصد (۲۳=n) ژن blaCTX-M، ۳۵ درصد (۲۱=n) ژن blaSHV و ۳/۳۳ درصد (۲=n) ایزوله دارای ژن blaKPC بود و هیچ یک از این جدایه ها حامل ژن magA نبودند.
نتیجه‌گیری: مقاومت آنتی بیوتیکی در بین کلبسیلا پنومونیه جدا شده از مدفوع داوطلبان سالم شرکت کننده در این مطالعه شایع بود. انتقال باکتری ها و پلاسمیدهای مقاوم از طریق منابع دهان و مدفوع، تهدیدی برای عموم مردم است که می تواند گزینه های درمانی عفونت های اکتسابی جامعه ناشی از کلبسیلا پنومونیه را پیچیده کند.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
باکتری شناسی پزشکی
دریافت: 1400/6/21 | پذیرش: 1400/8/19 | انتشار الکترونیک: 1400/9/17
دریافت: 1400/6/21 | پذیرش: 1400/8/19 | انتشار الکترونیک: 1400/9/17
فهرست منابع
1. Ghanavati R, Darban-Sarokhalil D, Navab-Moghadam F, Kazemian H, Irajian G, Razavi S. First report of coexistence of AmpC beta-lactamase genes in Klebsiella pneumoniae strains isolated from burn patients. Acta Microbiologica et Immunologica Hungarica AMicr. 2017;64(4):455-62. [DOI:10.1556/030.64.2017.028] [PMID] [PMCID]
2. Kuehn BM. "Nightmare" bacteria on the rise in US hospitals, long-term care facilities. JAMA. 2013;309(15):1573-4. [DOI:10.1001/jama.2013.2922] [PMID]
3. Russo TA, Marr CM. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae. Clinical microbiology reviews. 2019;32(3). [DOI:10.1128/CMR.00001-19] [PMID] [PMCID]
4. Zhanel GG, DeCorby M, Adam H, Mulvey MR, McCracken M, Lagace-Wiens P, et al. Prevalence of antimicrobial-resistant pathogens in Canadian hospitals: results of the Canadian Ward Surveillance Study (CANWARD 2008). Antimicrob Agents Chemother. 2010;54(11):4684-93. [DOI:10.1128/AAC.00469-10] [PMID] [PMCID]
5. Ghanavati R, Kazemian H, Asadollahi P, Heidari H, Irajian G, Navab-Moghadam F, et al. Characterization of antimicrobial resistance patterns of Klebsiella pneumoniae isolates obtained from wound infections. Infect Disord Drug Targets. 2021;21(1):119-24. [DOI:10.2174/1871526520666200129124924] [PMID]
6. Feizabadi MM, Delfani S, Raji N, Majnooni A, Aligholi M, Shahcheraghi F, et al. Distribution of bla TEM, bla SHV, bla CTX-M genes among clinical isolates of Klebsiella pneumoniae at Labbafinejad Hospital, Tehran, Iran. Microbial drug resistance. 2010;16(1):49-53. [DOI:10.1089/mdr.2009.0096] [PMID]
7. Canton R, Coque TM. The CTX-M beta-lactamase pandemic. Curr Opin Microbiol. 2006;9(5):466-75. [DOI:10.1016/j.mib.2006.08.011] [PMID]
8. Leylabadlo HE, Pourlak T, Bialvaei AZ, Aghazadeh M, Asgharzadeh M, Kafil HS. Extended-Spectrum Beta-Lactamase Producing Gram Negative Bacteria in Iran: A Review. Afr J Infect Dis. 2017;11(2):39-53. [DOI:10.21010/ajid.v11i2.6] [PMID] [PMCID]
9. El Fertas-Aissani R, Messai Y, Alouache S, Bakour R. Virulence profiles and antibiotic susceptibility patterns of Klebsiella pneumoniae strains isolated from different clinical specimens. Pathol Biol (Paris). 2013;61(5):209-16. [DOI:10.1016/j.patbio.2012.10.004] [PMID]
10. Sedighi M, Zahedi Bialvaei A, Hamblin MR, Ohadi E, Asadi A, Halajzadeh M, et al. Therapeutic bacteria to combat cancer; current advances, challenges, and opportunities. Cancer Med. 2019;8(6):3167-81. [DOI:10.1002/cam4.2148] [PMID] [PMCID]
11. Barreto S, Zambrano M, Araque M. Phenotypic variations of susceptibility in Klebsiella pneumoniae strains of nosocomial origin and their association with biofilm formation. Investigacion clinica. 2009;50(2):221-9.
12. Schroll C, Barken KB, Krogfelt KA, Struve C. Role of type 1 and type 3 fimbriae in Klebsiella pneumoniae biofilm formation. BMC Microbiol. 2010;10(1):179. [DOI:10.1186/1471-2180-10-179] [PMID] [PMCID]
13. Bartoloni A, Pallecchi L, Benedetti M, Fernandez C, Vallejos Y, Guzman E, et al. Multidrug-resistant commensal Escherichia coli in children, Peru and Bolivia. Emerg Infect Dis. 2006;12(6):907-13. [DOI:10.3201/eid1206.051258] [PMID] [PMCID]
14. Shivaee A, Mirshekar M. Association between ESBLs Genes and Quinolone Resistance in Uropathogenic Escherichia coli Isolated from Patients with Urinary Tract Infection. Infection Epidemiology and Microbiology. 2019;5(1):15-23.
15. Donskey CJ. Antibiotic regimens and intestinal colonization with antibiotic-resistant gram-negative bacilli. Clin Infect Dis. 2006;43 Suppl 2(Supplement_2):S62-9. [DOI:10.1086/504481] [PMID]
16. Reddy P, Malczynski M, Obias A, Reiner S, Jin N, Huang J, et al. Screening for extended-spectrum β-lactamase-producing Enterobacteriaceae among high-risk patients and rates of subsequent bacteremia. Clinical infectious diseases. 2007;45(7):846-52. [DOI:10.1086/521260] [PMID]
17. Najjuka CF, Kateete DP, Kajumbula HM, Joloba ML, Essack SY. Antimicrobial susceptibility profiles of Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae isolated from outpatients in urban and rural districts of Uganda. BMC Res Notes. 2016;9(1):235. [DOI:10.1186/s13104-016-2049-8] [PMID] [PMCID]
18. Najar Peerayeh S, Eslami M, Memaryani M, Siadat SD. High Prevalence of bla CTX-M-1 Group Extended-Spectrum β-lactamase Genes in Escherichia coli Isolates From Tehran. Jundishapur Journal of Microbiology. 2013;6(7):e6863. [DOI:10.5812/jjm.6863]
19. Bialvaei AZ, Pourlak T, Aghamali M, Asgharzadeh M, Gholizadeh P, Kafil HS. The prevalence of CTX-M-15 extended-spectrum β-lactamases among Salmonella spp. and Shigella spp. isolated from three Iranian hospitals. European Journal of Microbiology and Immunology. 2017;7(2):133-7. [DOI:10.1556/1886.2017.00004] [PMID] [PMCID]
20. Nakamura A, Komatsu M, Noguchi N, Ohno Y, Hashimoto E, Matsutani H, et al. Analysis of molecular epidemiologic characteristics of extended-spectrum beta-lactamase (ESBL)-producing Escherichia coli colonizing feces in hospital patients and community dwellers in a Japanese city. J Infect Chemother. 2016;22(2):102-7. [DOI:10.1016/j.jiac.2015.11.001] [PMID]
21. Luvsansharav UO, Hirai I, Niki M, Sasaki T, Makimoto K, Komalamisra C, et al. Analysis of risk factors for a high prevalence of extended-spectrum {beta}-lactamase-producing Enterobacteriaceae in asymptomatic individuals in rural Thailand. J Med Microbiol. 2011;60(Pt 5):619-24. [DOI:10.1099/jmm.0.026955-0] [PMID]
22. Li B, Sun JY, Liu QZ, Han LZ, Huang XH, Ni YX. High prevalence of CTX-M beta-lactamases in faecal Escherichia coli strains from healthy humans in Fuzhou, China. Scand J Infect Dis. 2011;43(3):170-4. [DOI:10.3109/00365548.2010.538856] [PMID]
23. Mansury D, Motamedifar M, Sarvari J, Shirazi B, Khaledi A. Antibiotic susceptibility pattern and identification of extended spectrum beta-lactamases (ESBLs) in clinical isolates of Klebsiella pneumoniae from Shiraz, Iran. Iran J Microbiol. 2016;8(1):55-61.
24. asadpour nn. Frequency of Multidrug Resistant Beta Lactamase Producer Klebsiella Pneumoniae in Urinary Tract Infections in Rasht. Journal of Ilam University of Medical Sciences. 2017;25(2):82-90. [DOI:10.29252/sjimu.25.2.82]
25. Joo EJ, Kim SJ, Baek M, Choi Y, Seo J, Yeom JS, et al. Fecal Carriage of Antimicrobial-Resistant Enterobacteriaceae in Healthy Korean Adults. J Microbiol Biotechnol. 2018;28(7):1178-84. [DOI:10.4014/jmb.1801.12060] [PMID]
26. Lu B, Zhou H, Zhang X, Qu M, Huang Y, Wang Q. Molecular characterization of Klebsiella pneumoniae isolates from stool specimens of outpatients in sentinel hospitals Beijing, China, 2010-2015. Gut Pathog. 2017;9(1):39. [DOI:10.1186/s13099-017-0188-7] [PMID] [PMCID]
27. Candan ED, Aksoz N. Klebsiella pneumoniae: characteristics of carbapenem resistance and virulence factors. Acta Biochim Pol. 2015;62(4):867-74. [DOI:10.18388/abp.2015_1148] [PMID]
28. Rodriguez-Navarro J, Miro E, Brown-Jaque M, Hurtado JC, Moreno A, Muniesa M, et al. Comparison of Commensal and Clinical Isolates for Diversity of Plasmids in Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae. Antimicrob Agents Chemother. 2020;64(5). [DOI:10.1128/AAC.02064-19] [PMID] [PMCID]
29. Fu L, Huang M, Zhang X, Yang X, Liu Y, Zhang L, et al. Frequency of virulence factors in high biofilm formation blaKPC-2 producing Klebsiella pneumoniae strains from hospitals. Microb Pathog. 2018;116:168-72. [DOI:10.1016/j.micpath.2018.01.030] [PMID]
30. Hossieni SE, Amini A, Soltanmoradi H, Ebrahimzadeh Namvar A. Frequency of fimH, magA and rmpA Genes among Klebsiella pneumoniae Isolates in Hospitalized Patients in Babol, Iran. Avicenna J Clin Med. 2018;25(2):121-6. [DOI:10.21859/ajcm.25.2.121]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
