سال 14، شماره 6 - ( آذر - دی 1399 )
جلد 14 شماره 6 صفحات 583-566 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Rouhi V, Safarkar R, Habibi S. Phonotypic Investigation of Biofilm Formation and Determination of Presence of bap and blaOXA-51 Genes in Acinetobacter baumannii From Clinical Specimens in Tehran. Iran J Med Microbiol 2020; 14 (6) :566-583
URL: http://ijmm.ir/article-1-1110-fa.html
URL: http://ijmm.ir/article-1-1110-fa.html
روحی وحید، سفرکار رویا، حبیبی ساناز. ارزیابی فنوتیپی تشکیل بیوفیلم و تعیین حضور ژن‌های blaoxa-51 و bap در ایزوله‌های اسینتوباکتر بومانی نمونه‌های بالینی در شهر تهران. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1399; 14 (6) :566-583
وحید روحی1 
، رویا سفرکار 2، ساناز حبیبی3
، رویا سفرکار 2، ساناز حبیبی3
1- گروه زیست شناسی، واحد اردبیل، دانشگاه آزاد اسلامی، اردبیل، ایران
2- گروه زیست شناسی، واحد اردبیل، دانشگاه آزاد اسلامی، اردبیل، ایران ،royasafarkar@yahoo.com
3- گروه زیست شناسی،دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد رشت، ایران
2- گروه زیست شناسی، واحد اردبیل، دانشگاه آزاد اسلامی، اردبیل، ایران ،
3- گروه زیست شناسی،دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد رشت، ایران
چکیده: (4038 مشاهده)
زمینه و اهداف: اسینتوباکتربومانی، کوکوباسیل گرم منفی غیرتخمیری است که مقاومت بالایی به ترکیبات ضد میکروبی نشان می دهد. تشکیل بیوفیلم یکی از ویژگی های مهم بسیاری از گونه های اسینتوباکتر است که منجر به مقاومت بالا به آنتی‌بیوتیک‌ها می‌شود. مطالعه حاضر با هدف بررسی توانایی تشکیل بیوفیلم و تعیین فراوانی ژن bap و blaOXA-51 در جدایه‌های بالینی اسینتوباکتر بومانی است.
مواد و روش کار: در این مطالعه توصیفی- مقطعی در سال 98، تعداد 165 ایزوله از بیمارستان های شهر تهران جمع آوری وآزمایشات تاییدی به منظور شناسایی باکتری انجام شد. بررسی الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی ایزوله‌ها با روش انتشار دیسک در مقابل10 آنتی‌بیوتیک و همچنین توانایی تولید بیوفیلم به روش میکروتیترپلیت و لوله‌ای بررسی شد. سپس با روش‌های مولکولی، ژن‌های blaOXA-51 و bap شناسایی شدند و میزان فراوانی آن ها بررسی گردید.
یافته‌ها: در این مطالعه از بین 165 ایزوله بررسی شده 73 ایزوله به عنوان اسینتوباکتر بومانی تایید شد. از بین 73 ایزوله بیشترین مقاومت دارویی متعلق به ایمی‌پنم (94/52درصد) بود. ژن‌های blaOXA-51 و bap به ترتیب در 100و 42/53 درصد ایزوله‌ها ردیابی شدند. همچنین با استفاده از روش میکروتیترپلیت 8 (10/95درصد) ایزوله و با استفاده از روش لوله‌ای 7 (9/58درصد) ایزوله‌ها، توانایی تشکیل بیوفیلم قوی را داشتند.
نتیجه‌گیری: نتایج به دست آمده نشان داد که مطابق با مطالعات دیگر،تشکیل بیوفیلم در ایزوله اسینتوباکتر بومانی با حضور ژن bap همراه است.
مواد و روش کار: در این مطالعه توصیفی- مقطعی در سال 98، تعداد 165 ایزوله از بیمارستان های شهر تهران جمع آوری وآزمایشات تاییدی به منظور شناسایی باکتری انجام شد. بررسی الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی ایزوله‌ها با روش انتشار دیسک در مقابل10 آنتی‌بیوتیک و همچنین توانایی تولید بیوفیلم به روش میکروتیترپلیت و لوله‌ای بررسی شد. سپس با روش‌های مولکولی، ژن‌های blaOXA-51 و bap شناسایی شدند و میزان فراوانی آن ها بررسی گردید.
یافته‌ها: در این مطالعه از بین 165 ایزوله بررسی شده 73 ایزوله به عنوان اسینتوباکتر بومانی تایید شد. از بین 73 ایزوله بیشترین مقاومت دارویی متعلق به ایمی‌پنم (94/52درصد) بود. ژن‌های blaOXA-51 و bap به ترتیب در 100و 42/53 درصد ایزوله‌ها ردیابی شدند. همچنین با استفاده از روش میکروتیترپلیت 8 (10/95درصد) ایزوله و با استفاده از روش لوله‌ای 7 (9/58درصد) ایزوله‌ها، توانایی تشکیل بیوفیلم قوی را داشتند.
نتیجه‌گیری: نتایج به دست آمده نشان داد که مطابق با مطالعات دیگر،تشکیل بیوفیلم در ایزوله اسینتوباکتر بومانی با حضور ژن bap همراه است.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
باکتری شناسی پزشکی
دریافت: 1399/2/3 | پذیرش: 1399/5/27 | انتشار الکترونیک: 1399/8/6
دریافت: 1399/2/3 | پذیرش: 1399/5/27 | انتشار الکترونیک: 1399/8/6
فهرست منابع
1. Kooti S, Motamedifar M, Sarvari J. Antibiotic resistance profile and distribution of oxacillinase genes among clinical isolates of Acinetobacter baumannii in Shiraz teaching hospitals, 2012-2013. Jundishapur J Microbiol. 2015 ;8(8). [DOI:10.5812/jjm.20215v2]
2. Cerqueira GM, Peleg AY. Insights into Acinetobacter baumannii pathogenicity. IUBMB life. 2011;63(12):1055-60. [DOI:10.1002/iub.533] [PMID]
3. McConnell MJ, Actis L, Pachón J. Acinetobacter baumannii human infections, factors contributing to pathogenesis and animal models . FEMS Microbiol Rev. 2013;37(2):130-55 [DOI:10.1111/j.1574-6976.2012.00344.x] [PMID]
4. Gaddy JA, Actis LA. Regulation of Acinetobacter baumannii biofilm formation. Future Microbiol. 2009;4(3):273-8. [DOI:10.2217/fmb.09.5] [PMID] [PMCID]
5. Brossard KA, Campagnari AA. The Acinetobacter baumannii biofilm-associated protein plays a role in adherence to human epithelial cells. Infect Immun. 2012;80(1):228-33 [DOI:10.1128/IAI.05913-11] [PMID] [PMCID]
6. Ford M. Med Microbiol. Oxford University Press; 2014.
7. Zhao C, Xing M, Yang J, Lu Y, Lv B. Microbial community structure and metabolic property of biofilms in vermifiltration for liquid-state sludge stabilization using PLFA profiles. Bioresour Technol. 2014; 151:340-6. [DOI:10.1016/j.biortech.2013.10.075] [PMID]
8. Thummeepak R, Kongthai P, Leungtongkam U, Sitthisak S. Distribution of virulence genes involved in biofilm formation in multi-drug resistant Acinetobacter baumannii clinical isolates. Int Microbiol. 2016 ;19(2):121-9.
9. Loehfelm TW, Luke NR, Campagnari AA. Identification and characterization of an Acinetobacter baumannii biofilm associated protein. J. Bacteriol. 2008; 190: 1036-1044. [DOI:10.1128/JB.01416-07] [PMID] [PMCID]
10. Dadgar T, Vahedi Z, Yazdansetad S, Kiaei E, Asaadi H. Phenotypic Investigation of Biofilm Formation and the Prevalence of icaA and icaD Genes in Staphylococcus epidermidis Isolates . Iran J Med Microbiol. 2019; 12 (6) :371-381 [DOI:10.30699/ijmm.12.6.371]
11. Jalali M, Rasooli I, Ahmadi Zanoos K, Jahangiri A, Jalali Nadooshan M, Darvish Alipour Astaneh S. Immunogenicity of amino acid region 7601-8140 in biofilm associated protein of Acinetobacter baumannii. Pathobiol Res. 2014 ;16(4):15-26.
12. Wayne PA. Clinical and laboratory standards institute, performance standards for antimicrobial susceptibility testing; 29th informational supplement M100, CLSI, 2019.
13. Ranjbar R, Memariani M. Multilocus variable-number tandem-repeat analysis for genotyping of Shigella sonnei strains isolated from pediatric patients. Gastroenterology and hepatology from bed to bench. 2015;8(3): 225. [DOI:10.26226/morressier.56d5ba2dd462b80296c94fd4]
14. Woodford N, Ellington MJ, Coelho JM, Turton JF, Ward ME, Brown S, et al. Multiplex PCR for genes encoding prevalent OXA carbapenemases in Acinetobacter spp.Int J Antimicrob Agents. 2006 ;27(4):351-3. [DOI:10.1016/j.ijantimicag.2006.01.004] [PMID]
15. Heidari H, Hadadi M, Ebrahim-Saraie HS, Mirzaei A, Taji A, Hosseini SR, Motamedifar M. Characterization of virulence factors, antimicrobial resistance patterns and biofilm formation of Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus spp. strains isolated from corneal infection. J francais d'ophtalmologie 2018 ;41(9):823-9 [DOI:10.1016/j.jfo.2018.01.012] [PMID]
16. Ruchi T, Sujata B, Anuradha D. Comparison of phenotypic methods for the detection of biofilm production in uro-pathogens in a tertiary care hospital in India. Int J Curr Microbiol App Sci. 2015;4(9):840-49.
17. Asif M, Alvi IA, Rehman SU. Insight into Acinetobacter baumannii pathogenesis global resistance mechanisms of resistance, treatment options, and alternative modalities. Infect Drug Resist. 2018; 11:1249. [DOI:10.2147/IDR.S166750] [PMID] [PMCID]
18. Cornejo-García JA, Perkins JR, Jurado-Escobar R, García-Martín E, Agúndez JA, Viguera E,et al. Pharmacogenomics of prostaglandin and leukotriene receptors. Front Pharmacol. 2016; 7:316. [DOI:10.3389/fphar.2016.00316] [PMID] [PMCID]
19. Hatami R. The frequency of multidrug-resistance and extensively drug-resistant Acinetobacter baumannii in west of Iran. J Clin Microbiol Infect Dis. 2018;1(1):4-8.
20. Goudarzi H, Douraghi M, Ghalavand Z, Goudarzi M. Assessment of antibiotic resistance pattern in Acinetobacter bumannii carrying bla oxA type genes isolated from hospitalized patients.Novelty Biomed. 2013 ;1(2):54-61.
21. You MJ, Kim WI, Cho HS, Shin GW, Hwang JH, Lee CS. Human anaplasmosis in acute febrile patients during scrub typhus season in Korea.Infect Chemother. 2015;47(3):181. [DOI:10.3947/ic.2015.47.3.181] [PMID] [PMCID]
22. Goudarzi M, Azimi H. Dissemination of classes 1, 2, and 3 integrons in acinetobacter baumannii strains recovered from intensive care units using polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism. Jundishapur J Microbiol. 2017;10(5). [DOI:10.5812/jjm.13100]
23. Longo F, Vuotto C, Donelli G. Biofilm formation in Acinetobacter baumannii. New Microbiol. 2014; 37(2):119-27
24. Qi L, Li H, Zhang C, Liang B, Li J, Wang L, et al. Relationship between antibiotic resistance, biofilm formation and biofilm-specific resistance in Acinetobacter baumannii. Front Microbiol. 2016; 7:483 [DOI:10.3389/fmicb.2016.00483] [PMID] [PMCID]
25. Sung JY, Koo SH, Kim S, Kwon GC. Persistence of multidrug-resistant Acinetobacter baumannii isolates harboring blaOXA-23 and bap for 5 years. J Microbiol Biotechno. 2016 ;26(8):1481-9. [DOI:10.4014/jmb.1604.04049] [PMID]
26. Goh HS, Beatson SA, Totsika M, Moriel DG, Phan MD, Szubert J, et al. Molecular analysis of the Acinetobacter baumannii biofilm-associated protein. Appl. Environ Microbiol 2013;79(21):6535-43. [DOI:10.1128/AEM.01402-13] [PMID] [PMCID]
27. Luo TL, Rickard AH, Srinivasan U, Kaye KS, Foxman B. Association of blaOXA-23 and bap with the persistence of Acinetobacter baumannii within a major healthcare system. Front Microbiol. 2015; 6:182. [DOI:10.3389/fmicb.2015.00182] [PMID] [PMCID]
28. Keshavarz-Hedayati S, Shapouri R, Habibollah-Pourzereshki N, Bigverdi R, Peymani A. Molecular investigation of resistance to disinfectants in Acinetobacter Baumannii isolates collected from Qazvin hospitals, Iran 2017. J Qazvin Univ Med Sci. 2019;23(1):2-13. [DOI:10.32598/JQUMS.23.1.2]
29. Abdulzahra AT, Khalil MA, Elkhatib WF. First report of colistin resistance among carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii isolates recovered from hospitalized patients in Egypt. New Microbes New Infect. 2018; 26:53-8. [DOI:10.1016/j.nmni.2018.08.007] [PMID] [PMCID]
30. El-Khier NTA, ElKazzaz SS, Elganainy AE. Phenotypic and Genotypic Detection of Biofilm Formation in Staphylococcus epidermidis Isolates from Retrieved Orthopaedic Implants and Prostheses. Br Microbiol Res J. 2015; 9(4): 1-10. [DOI:10.9734/BMRJ/2015/18650]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
