سال 18، شماره 1 - ( بهمن - اسفند 1402 )                   جلد 18 شماره 1 صفحات 56-49 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Fattahi Bafghi A, Eslami G, Emtiazi H, Mozayan M R, Zarei E, Bagheri P et al . In vitro Evaluation of Yazd Honey Effect on Leishmania major [MRHO/IR/75/ER] Promastigotes. Iran J Med Microbiol 2024; 18 (1) :49-56
URL: http://ijmm.ir/article-1-2203-fa.html
فتاحی بافقی علی، اسلامی گیلدا، امتیازی حمیده، مزین محمدرضا، زارعی المیرا، باقری پریسا و همکاران.. ارزیابی اثر عسل یزد بر پروماستیگوت لیشمانیا ماژور [MRHO/IR/75/ER] در شرایط آزمایشگاهی. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1402; 18 (1) :49-56

URL: http://ijmm.ir/article-1-2203-fa.html


1- گروه انگل‌شناسی و قارچ‌شناسی، مرکز تحقیقات بیماری‌های عفونی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
2- دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
3- گروه دروس عمومی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید صدوقی، یزد، ایران
4- گروه هماتولوژی و بانک خون، دانشکده علوم پیراپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
5- گروه هماتولوژی و بانک خون، دانشکده پیراپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی گراش، گراش، ایران
6- گروه انگل شناسی و قارچ شناسی پزشکی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران ، Rezaee.para92@gmail.com
چکیده:   (213 مشاهده)

زمینه و اهداف:  لیشمانیوز یک بیماری انگلی است که توسط گزش برخی از گونه های پشه خاکی منتقل می شود. عامل بیماری انگل های تک یاخته ای از جنس لیشمانیا می باشد. این مطالعه به بررسی آزمایشگاهی اثر عسل یزد بر پروماستیگوت‌های لیشمانیا ماژور [MRHO/IR/۷۵/ER] در فازهای ثابت و لگاریتمی پرداخت.
مواد و روش کار:  عسل حاصل از چندین گل مختلف به‌دست‌آمده توسط زنبورداران مجرب یزد (یزد، ایران) در فصل برداشت عسل سال ۱۳۹۵ در مطالعه استفاده گردید. سویه ای از  لیشمانیا ماژور با نام [MRHO/IR/۷۵/ER] در موش BALB/c کشت داده شد. آماستیگوت‌ها را از طحال این موش‌ها استخراج کردیم و سپس آنها را در محیط Novy-MacNeal-Nicolle (NNN) به پروماستیگوت تبدیل کردیم. سپس سویه لیشمانیا ماژور با دقت تهیه و جمعیت‌های انگل در محیط مشخص شده با استفاده از روش میکروسکوپی و همچنین روش سنجش ایمونوسوربنت متصل به آنزیم (ELISA) مورد پایش و اندازه‌گیری قرار گرفت. کشت لیشمانیا با مقدار ثابتی از انگل ها شروع و سپس آنها را در ویال های درپوش دار حاوی ۵ میلی لیتر از محیط مایع قرار داده دادیم. این محیط با غلظت های مختلف عسل شامل ۶.۲۵، ۱۲.۵، ۲۵ و ۵۰ میکروگرم در میلی لیتر مواجهه یافت. سپس این ویال‌ها برای چندین بازه زمانی انکوبه شدند (زمان شروع آزمایش و پس از گذشت ۶، ۱۲، ۲۴، ۴۸، ۷۲ و ۹۶ ساعت).
یافته ها:  نتایج شمارش‌ تعداد انگل به‌دست‌آمده در گروههای مداخله با گروه شاهد مقایسه گردید. در این مطالعه مشخص شد که با افزایش غلظت عسل (۶/۲۵ تا ۵۰ میکروگرم در میلی‌لیتر) و مدت زمان تماس (۶ الی ۹۶ ساعت)، بار انگل کاهش می‌یابد.
نتیجه‌گیری:  یافته‌های مطالعه حاضر نشان داد که عسل توانایی مهار رشد و بقای انگل‌ لیشمانیا را داشته و می توان آن را به عنوان یک موضوع بالقوه برای تحقیقات آتی در مدل حیوانی و انسانی مورد توجه قرار داد.

متن کامل [PDF 619 kb]   (34 دریافت)    
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: انگل شناسی پزشکی
دریافت: 1402/9/6 | پذیرش: 1402/11/28 | انتشار الکترونیک: 1402/12/28

فهرست منابع
1. Fattahi Bafghi A, Rezaee E, Ahmadi S, Gholamrezaei M, Firouzeh N. Review of Molecular Approaches in Leishmaniasis Vaccines: Implications and Restrictions. Int J Infect. 2022;9(2):e121894. [DOI:10.5812/iji-121894]
2. Ramezankhani R, Sajjadi N, Nezakati esmaeilzadeh R, Jozi SA, Shirzadi MR. Climate and environmental factors affecting the incidence of cutaneous leishmaniasis in Isfahan, Iran. Environ Sci Pollut Res Int. 2018;25:11516-26. [DOI:10.1007/s11356-018-1340-8] [PMID]
3. Golpayegani AA, Moslem AR, Akhavan AA, Zeydabadi A, Mahvi AH, Allah-Abadi A. Modeling of Environmental Factors Affecting the Prevalence of Zoonotic and Anthroponotic Cutaneous, and Zoonotic Visceral Leishmaniasis in Foci of Iran: a Remote Sensing and GIS Based Study. J Arthropod Borne Dis. 2018;12(1):41-66.
4. Malek MS, Robi IH, Islam MS, Kabir MA, Uddin MZ, Sumon SM, et aI. Clinical and Hematological Features of Visceral Leishmaniasis at Mymensingh Medical College Hospital. Mymensingh Med J. 2020;29(4):879-86.
5. Volpedo G, Pacheco-Fernandez T, Holcomb EA, Cipriano N, Cox B, Satoskar AR. Mechanisms of immunopathogenesis in cutaneous leishmaniasis and post kala-azar dermal leishmaniasis (PKDL). Front Cell Infect Microbiol. 2021;11:685296. [DOI:10.3389/fcimb.2021.685296] [PMID] [PMCID]
6. Mohammadbeigi A, Khazaei S, Heidari H, Asgarian A, Arsangjang S, Saghafipour A, et al. An investigation of the effects of environmental and ecologic factors on cutaneous leishmaniasis in the old world: a systematic review study. Rev Environ Health. 2021;36(1):117-28. [DOI:10.1515/reveh-2020-0066] [PMID]
7. de Souza RAF, Andreoli RV, Kayano MT, Carvalho AL. American cutaneous leishmaniasis cases in the metropolitan region of Manaus, Brazil: association with climate variables over time. Geospat Health. 2015;10(1):314. [DOI:10.4081/gh.2015.314] [PMID]
8. Seid A, Gadisa E, Tsegaw T, Abera A, Teshome A, Mulugeta A, et al. Risk map for cutaneous leishmaniasis in Ethiopia based on environmental factors as revealed by geographical information systems and statistics. Geospat Health. 2014;8(2):377-87. [DOI:10.4081/gh.2014.27] [PMID]
9. Hartley MA, Drexler S, Ronet C, Beverley SM, Fasel N. The immunological, environmental, and phylogenetic perpetrators of metastatic leishmaniasis. Trends Parasitol. 2014;30(8):412-22. [DOI:10.1016/j.pt.2014.05.006] [PMID] [PMCID]
10. Den Boer M, Argaw D, Jannin J, Alvar J. Leishmaniasis impact and treatment access. Clin Microbiol Infect. 2011;17(10):1471-7. [DOI:10.1111/j.1469-0691.2011.03635.x] [PMID]
11. Alvar J, Yactayo S, Bern C. Leishmaniasis and poverty. Trends Parasitol. 2006;22(12):552-7. [DOI:10.1016/j.pt.2006.09.004] [PMID]
12. MMusa YM, Haruna AK, Ilyas M, Yaro AH, Ahmadu AA, Usman H. Phytochemical, analgesic and anti-inflammatory effects of the ethylacetate extract of the leaves of Pseudocedrella kotschyii. Afr J Tradit Complement Altern Med. 2008;5(1):92-6. [DOI:10.4314/ajtcam.v5i1.31261] [PMID] [PMCID]
13. Pospíšil Jr, Konrádová D, Strnad M. Antileishmanial Activity of Lignans, Neolignans, and Other Plant Phenols. Prog Chem Org Nat Prod. 2021;115:115-76. [DOI:10.1007/978-3-030-64853-4_3] [DOI:10.1007/978-3-030-64853-4_5] [PMID]
14. Parvandi M, Rezadoost H, Farzaneh M. Introducing Alternaria tenuissima SBUp1, as an endophytic fungus of Ferula assa‐foetida from Iran, which is a rich source of rosmarinic acid. Lett Appl Microbiol. 2021;73(5):569-78. [DOI:10.1111/lam.13542] [PMID]
15. Seraglio SK, Schulz M, Brugnerotto P, Silva B, Gonzaga LV, Fett R, et al. Quality, composition and health-protective properties of citrus honey: A review. Food Res Int. 2021;143:110268. [DOI:10.1016/j.foodres.2021.110268] [PMID]
16. Mustafa G, Iqbal A, Javid A, Hussain A, Bukhari SM, Ali W, et al. Variations in nutritional profile of honey produced by various species of genus Apis. Braz J Biol. 2021;83:e246651. [DOI:10.1590/1519-6984.246651] [PMID]
17. Ding Y, Xu M, Lu Q, Wei P, Tan J, Liu R. Combination of honey with metformin enhances glucose metabolism and ameliorates hepatic and nephritic dysfunction in STZ-induced diabetic mice. Food Func. 2019;10(11):7576-87. [DOI:10.1039/C9FO01575B] [PMID]
18. Akimov MY, Bessonov VV, Kodentsova VM, Eller KI, Vrzhesinskaya OA, Beketova NA, et al. Biological value of fruits and berries of Russian production. Prob Nutr. 2020;89(4):220-32.
19. Ng WJ, Sit NW, Ooi PA, Ee KY, Lim TM. The antibacterial potential of honeydew honey produced by stingless bee (Heterotrigona itama) against antibiotic resistant bacteria. Antibiotics. 2020;9(12):871. [DOI:10.3390/antibiotics9120871] [PMID] [PMCID]
20. Bassam Z, Zohra BI, Saada AA. The effects of honey on Leishmania parasites: an in vitro study. Trop Doctor. 1997;27(1_suppl):36-8. [DOI:10.1177/00494755970270S112]
21. Murray HW, Berman JD, Davies CR, Saravia NG. Advances in leishmaniasis. The Lancet. 2005;366(9496):1561-77. [DOI:10.1016/S0140-6736(05)67629-5] [PMID]
22. Alzahrani HA, Alsabehi R, Boukraâ L, Abde-llah F, Bellik Y, Bakhotmah BA. Antibacterial and antioxidant potency of floral honeys from different botanical and geographical origins. Molecules. 2012;17(9):10540-9. [DOI:10.3390/molecules170910540] [PMID] [PMCID]
23. Endo EH, Makimori RY, Companhoni MV, Ueda-Nakamura T, Nakamura CV, Dias Filho BP. Ketoconazole-loaded poly-(lactic acid) nanoparticles: Characterization and improvement of antifungal efficacy in vitro against Candida and dermatophytes. J Mycol Med. 2020;30(3):101003. [DOI:10.1016/j.mycmed.2020.101003] [PMID]
24. Ghapanchi J, Moattari A, Tadbir AA, Talatof Z. Sara Pour shahidi, Hooman Ebrahimi. The in vitro anti-viral activity of Honey on Type 1 Herpes simplex virus. Aust J Basic Appl Sci. 2011;5(12):849-52.
25. Shendge AK, Chaudhuri D, Mandal N. The natural flavones, acacetin and apigenin, induce Cdk-Cyclin mediated G2/M phase arrest and trigger ROS-mediated apoptosis in glioblastoma cells. Mol Biol Rep. 2021;48(1):539-49. [DOI:10.1007/s11033-020-06087-x] [PMID]
26. Parvizi MM, Zare F, Handjani F, Nimrouzi M, Zarshenas MM. Overview of herbal and traditional remedies in the treatment of cutaneous leishmaniasis based on Traditional Persian Medicine. Dermatol Ther. 2020;33(4):e13566. [DOI:10.1111/dth.13566]
27. Aksoy T, Sivcan E, Doğan F, Çetin S, Yar TM. Investigation of anti-leishmanial effects of bee products (honey, propolis) on Leishmania tropica promastigotes. Mikrobiyoloji Bulteni. 2020;54(3):479-89. [DOI:10.5578/mb.69632] [PMID]
28. Gholizadeh H, Ghaffarifar F, Dalimi A, Dayer MS. In vitro and in vivo effects of natural honey on Leishmania major. Ann Parasitol. 2022;68(1):71-6.
29. Sinha S, Sehgal A, Ray S, Sehgal R. Benefits of Manuka Honey in the Management of Infectious Diseases: Recent Advances and Prospects. Mini Rev Med Chem. 2023;23(20):1928-41. [DOI:10.2174/1389557523666230605120717] [PMID]
30. Sherafati J, Dayer MS, Ghaffarifar F, Akbarzadeh K, Pirestani M. Evaluating leishmanicidal effects of Lucilia sericata products in combination with Apis mellifera honey using an in vitro model. Plos One. 2023;18(8):e0283355. [DOI:10.1371/journal.pone.0283355] [PMID] [PMCID]
31. Almasaudi S. The antibacterial activities of honey. Saudi J Biol Sci. 2021;28(4):2188-96. [DOI:10.1016/j.sjbs.2020.10.017] [PMID] [PMCID]
32. Fernandes L, Ribeiro H, Oliveira A, Silva AS, Freitas A, Henriques M, et al. Portuguese honeys as antimicrobial agents against Candida species. J Tradit Complement Med. 2021;11(2):130-6. [DOI:10.1016/j.jtcme.2020.02.007] [PMID] [PMCID]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله میکروب شناسی پزشکی ایران می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق   ناشر: موسسه فرنام

© 2024 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Medical Microbiology

Designed & Developed by : Yektaweb Publishr: Farname Inc.