سال 16، شماره 4 - ( مرداد - شهریور 1401 )                   جلد 16 شماره 4 صفحات 311-305 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Moghadam S, Moradi Bidhendi S, Khaki P. Molecular Identification of Salmonella Strains Isolated from Livestock in Alborz Province and Their Serotyping. Iran J Med Microbiol. 2022; 16 (4) :305-311
URL: http://ijmm.ir/article-1-1358-fa.html
مقدم سارا، مرادی بیدهندی سهیلا، خاکی پژواک. شناسایی مولکولی سالمونلاهای جدا شده از دام در استان البرز و سروتایپینگ آن‌ها. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1401; 16 (4) :311-305

URL: http://ijmm.ir/article-1-1358-fa.html


1- گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال، تهران، ایران
2- موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران ، s.moradibidhendi@yahoo.com
3- موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
چکیده:   (463 مشاهده)
زمینه و اهداف:  سالمونلوزیس یکی از بیماری‌­های مهم عفونی و یک بیماری مشترک در انسان و حیوانات می­‌باشد که اهمیت شناخت و کنترل این گونه را ضروری‌­تر می‌­کند. روش‌­های مولکولی به ویژه PCR برای ژن­های ویرولانس می‌­تواند به شناسایی سریع و دقیق سویه‌­های سالمونلا کمک کند. لذا هدف از تحقیق حاضر شناسایی مولکولی بر اساس ژن‌های sivH، hilA و sefA و سروتایپینگ نمونه‌های سالمونلای جدا شده از دام در استان البرز بود.
مواد و روش کار:  در مطالعه حاضر ۳۰ نمونه سالمونلا جدا شده از دام در استان البرز در سال ۱۳۹۹ تهیه گردید. از شناسایی مورفولوژیک و محیط‌های افتراقی و اختصاصی برای جداسازی سالمونلا استفاده شد. سپس استخراج DNA به‌روش جوشاندن انجام شد و واکنش PCR برای ردیابی ژن‌های ویرولانس hilA، sivH و sefA صورت گرفت. همچنین حساسیت و اختصاصیت پرایمرهای مورد استفاده با استفاده از PCR تعیین شد.
یافته ها:  نتایج PCR نشان داد که ۲۷ جدایه (۹۰%) دارای ژن hilA، ۱۰ جدایه (۳۳/۳%) دارای ژن sefA و ۲۴ جدایه (۸۰%) دارای ژن sivH بودند. هم‌چنین بیشترین فراوانی مربوط سالمونلا تیفی‌موریوم (۱۰%) در بین سروتیپ‌ها بود. حسایت پرایمرهای ST۱۱-ST۱۵، hilA، sefA و sivH به‌ترتیب ng/mol ۰/۰۰۰۱، ۱، ۰/۱ و ۰/۰۰۱ ارزیابی شد. اختصاصیت پرایمرها برای سویه‌­های سالمونلا نیز مورد تایید قرار گرفت.
نتیجه‌گیری:  شناسایی دام­‌های آلوده به عفونت­‌های سالمونلا و جدا کردن آنها از سایر دام‌ها، از مهمترین روش­‌هایی می­‌باشد که می­تواند میزان شیوع عفونت غذایی را در مصرف کننده کاهش دهد. استفاده از روش PCR برای ژن­های حدت به ویژه hilA که فراوانی بیشتری در میان سویه‌­های سالمونلا دارد می­تواند به این مهم کمک کند.
متن کامل [PDF 1676 kb]   (136 دریافت)    
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: میکروب شناسی مولکولی
دریافت: 1400/3/18 | پذیرش: 1400/11/16 | انتشار الکترونیک: 1401/3/4

فهرست منابع
1. Azizpour A. Prevalence and Antibiotic Resistance of Salmonella Serotypes in Chicken Meat of Ardabil, Northwestern Iran. Iran J Med Microbiol. 2021;15(2):232-46. [DOI:10.30699/ijmm.15.2.232]
2. Ferrari RG, Rosario DK, Cunha-Neto A, Mano SB, Figueiredo EE, Conte-Junior CA. Worldwide epidemiology of Salmonella serovars in animal-based foods: a meta-analysis. Applied and environmental microbiology. 2019;85(14):e00591-19. [DOI:10.1128/AEM.00591-19] [PMID] [PMCID]
3. Jabin T, Siam EA-d, Dipu MR, Asaduzzaman M, Uddin A. Phenotypic characterization of Salmonella typhi from clinical specimens and determination of the drug susceptibility pattern of the isolates. Iran J Med Microbiol. 2021;15(2):189-94. [DOI:10.30699/ijmm.15.2.189]
4. Nozohour Y, Jalilzadeh G. Antibacterial Activities of Ethanolic Extract of Malva sylvestris L. Against Salmonella enterica and Escherichia coli Isolated from Diarrheic Lambs. Iran J Med Microbiol. 2021;15(1):121-9. [DOI:10.30699/ijmm.15.1.121]
5. Gast RK, Porter Jr RE. Salmonella infections. Dis Poult. 2020:717-53. [DOI:10.1002/9781119371199.ch16]
6. Bahadur DL, Prasad DI, Kumar YS, Md A, Zohorul IM. Prevalence and antibiotic resistance profile of Salmonella from livestock and poultry raw meat, Nepal. Int J Mol Vet Res. 2016;6.
7. Lee K-M, Runyon M, Herrman TJ, Phillips R, Hsieh J. Review of Salmonella detection and identification methods: Aspects of rapid emergency response and food safety. Food Control. 2015;47:264-76. [DOI:10.1016/j.foodcont.2014.07.011]
8. Odumeru JA, León-Velarde CG. Salmonella detection methods for food and food ingredients. Salmonella-A Dangerous Foodborne Pathogen Rijeka, Croatia: InTec. 2012:373-92.
9. Eriksson E, Aspan A. Comparison of culture, ELISA and PCR techniques for Salmonella detection in faecal samples for cattle, pig and poultry. BMC veterinary research. 2007;3(1):1-19. https://doi.org/10.1186/1746-6148-3-21 [DOI:10.1186/1746-6148-3-1] [PMID] [PMCID]
10. Oliveira S, Rodenbusch C, Ce M, Rocha S, Canal C. Evaluation of selective and non‐selective enrichment PCR procedures for Salmonella detection. Letters in Applied Microbiology. 2003;36(4):217-21. [DOI:10.1046/j.1472-765X.2003.01294.x] [PMID]
11. Mthembu TP, Zishiri OT, El Zowalaty ME. Molecular detection of multidrug-resistant Salmonella isolated from livestock production systems in South Africa. Infection and drug resistance. 2019;12:3537. [DOI:10.2147/IDR.S211618] [PMID] [PMCID]
12. Moradi Bidhendi S. A Review of studies on isolation, diagnosis and antimicrobial resistance of Salmonella in Iran. Vet Res Biol Prod. 2015;109(4):21-30.
13. Alam SB, Mahmud M, Akter R, Hasan M, Sobur A, Nazir K, et al. Molecular detection of multidrug resistant Salmonella species isolated from broiler farm in Bangladesh. Pathogens. 2020;9(3):201. [DOI:10.3390/pathogens9030201] [PMID] [PMCID]
14. Borges KA, Furian TQ, Borsoi A, Moraes HL, Salle CT, Nascimento VP. Detection of virulence-associated genes in Salmonella Enteritidis isolates from chicken in South of Brazil. Pesqui Vet Bras. 2013;33:1416-22. [DOI:10.1590/S0100-736X2013001200004]
15. Allam SA, Mostafa NY, Kirrella GA, Eleiwa NZ, El-Magd MA. Molecular detection of invA and hilA virulent genes in Salmonella serovars isolated from fresh water fish. Slov Vet Res. 2019;56(Suppl 22):693-8. [DOI:10.26873/SVR-809-2019]
16. Bugarel M, Tudor A, Loneragan G, Nightingale K. Molecular detection assay of five Salmonella serotypes of public interest: Typhimurium, Enteritidis, Newport, Heidelberg, and Hadar. Journal of microbiological methods. 2017;134:14-20. [DOI:10.1016/j.mimet.2016.12.011] [PMID]
17. Morshed R, PEYGHAMBARI S. Distribution of sefA gene among Salmonella Enteritidis isolates from poultry sources and potential as diagnostic and epidemiological tools. 2008.
18. Newell D, Elvers K, Dopfer D, Hansson I, Jones P, James S, et al. Biosecurity-based interventions and strategies to reduce Campylobacter spp. on poultry farms. Applied and environmental microbiology. 2011;77(24):8605-14. [DOI:10.1128/AEM.01090-10] [PMID] [PMCID]
19. Sever NK, Akan M. Molecular analysis of virulence genes of Salmonella Infantis isolated from chickens and turkeys. Microb Pathog. 2019;126:199-204. [DOI:10.1016/j.micpath.2018.11.006] [PMID]
20. Dashti AA, Jadaon MM, Abdulsamad AM, Dashti HM. Heat treatment of bacteria: a simple method of DNA extraction for molecular techniques. Kuwait Med J. 2009;41(2):117-22.
21. Pritha ST, Rahman S, Punom SA, Rahman MM, Nazir KNH, Islam MS. Isolation, Molecular Detection and Antibiogram of Multi-drug Resistant Salmonella Typhimurium DT104 from Selected Dairy Farms in Mymensingh, Bangladesh. Am J Microbioll Res. 2020;8(4):136-40.
22. Pui C, Wong W, Chai L, Tunung R, Jeyaletchumi P, Hidayah N, et al. Salmonella: A foodborne pathogen. Intl Food Res J. 2011;18(2).
23. Thung TY, Radu S, Mahyudin NA, Rukayadi Y, Zakaria Z, Mazlan N, et al. Prevalence, virulence genes and antimicrobial resistance profiles of Salmonella serovars from retail beef in Selangor, Malaysia. Frontiers in microbiology. 2018;8:2697. [DOI:10.3389/fmicb.2017.02697] [PMID] [PMCID]
24. Pan T-M, Liu Y-J. Identification of Salmonella enteritidis isolates by polymerase chain reaction and multiplex polymerase chain reaction. Journal of microbiology, immunology, and infection. 2002;35(3):147-51.
25. Ohud M, Eman MH, Hayam SA. Detection of Salmonella strains in clinical samples from Saudi Arabia by invA and hilA polymerase chain reaction (PCR)-based assays. Afr J Microbiol Res. 2012;6(25):5410-6. [DOI:10.5897/AJMR12.771]
26. Pathmanathan S, Cardona-Castro N, Sanchez-Jimenez M, Correa-Ochoa M, Puthucheary S, Thong KL. Simple and rapid detection of Salmonella strains by direct PCR amplification of the hilA gene. Journal of Medical Microbiology. 2003;52(9):773-6. [DOI:10.1099/jmm.0.05188-0] [PMID]
27. Ranjbar R, Dehkordi FS, Heiat M. The frequency of resistance genes in Salmonella enteritidis strains isolated from cattle. Iranian Journal of Public Health. 2020;49(5):968. [DOI:10.18502/ijph.v49i5.3215] [PMID] [PMCID]
28. Zahedi M, Rahimi E, Zahedi M, Momtaz H. Prevalence of Salmonella enteritidis and S. typhimurium in marketed meat in Shahrekord in 2014. J Shahrekord Univ Med Sci. 2017;19.
29. Webber B, Borges KA, Furian TQ, Rizzo NN, Tondo EC, Santos LRd, et al. Detection of virulence genes in Salmonella Heidelberg isolated from chicken carcasses. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. 2019;61. [DOI:10.1590/s1678-9946201961036] [PMID] [PMCID]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله میکروب شناسی پزشکی ایران می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق   ناشر: موسسه فرنام

© 2022 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Medical Microbiology

Designed & Developed by : Yektaweb Publishr: Farname Inc.