سال 13، شماره 5 - ( آذر - دی 1398 )
جلد 13 شماره 5 صفحات 405-392 |
برگشت به فهرست نسخه ها
احمد نصرالله زاده1 
، مرتضی خمیری 2، ماندانا محمودی1 ، علیرضا صادقی1 ، مریم ابراهیمی1
، مرتضی خمیری 2، ماندانا محمودی1 ، علیرضا صادقی1 ، مریم ابراهیمی1
1- گروه میکروبیولوژی مواد غذایی، دانشکده علوم و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
2- گروه میکروبیولوژی مواد غذایی، دانشکده علوم و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران ،khomeiri@gau.ac.ir
2- گروه میکروبیولوژی مواد غذایی، دانشکده علوم و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران ،
چکیده: (5697 مشاهده)
سابقه و هدف: امروزه علی رغم بهبود ایمنی مواد غذایی، نزدیک به یک چهارم جمعیت در معرض خطر ابتلا به بیماریهای ناشی از مواد غذایی میباشند. بنابراین استفاده از لاکتیک اسید باکتری ها به دلیل تولید مواد ضد میکروب طبیعی پیشنهاد می شود.
مواد و روشها: در این پژوهش، ابتدا جدایههای لاکتیکی با روش واکنش زنجیره ای پلیمراز (PCR) مورد شناسایی قرار گرفتند و سپس به‌منظور ارزیابی خاصیت ضد میکروبی محیط مایع مصرف شده بدون سلول کشت (CFSM) از روش میکرودایلوشن استفاده گردید.
یافتهها: توالییابی محصولات واکنش زنجیره ای پلیمراز نشان داد که گونههای شناسایی شده مربوط به جنسهای لاکتوباسیلوس و انتروکوکوس بودند. نتایج حاصل از ارزیابی خاصیت ضد باکتریایی محیط مایع مصرف شده بدون سلول کشت بر رشد باکتریهای بیماریزا گرم مثبت نشان داد که همه جدایهها قابلیت جلوگیری از رشد این دو پاتوژن را داشتند و درصد بازدارندگی آنها از ۳۸/۲۱ -۱۴/۸۶ درصد متغیر بود. نتایج اثرات بازدارندگی جدایههای لاکتیکی بر رشد دو باکتری گرم منفی اشریشیا کلای و سالمونلا انتریکا نیز نشان داد که میزان بازدارندگی جدایههای مورد بررسی به ترتیب از ۹۳/۳۶-۴۲/۲ درصد و ۹۷/۳۱-۱۴/۱ درصد متغیر بود. مقایسه میزان بازدارندگی جدایههای لاکتیکی بر روی باکتریهای بیماریزا نشان داد که میزان بازدارندگی تمام جدایههای لاکتیکی مورد بررسی بر روی باکتریهای گرم مثبت به شکل معنیداری (P<۰.۰۵) بیشتر از تأثیر آنها بر روی باکتریهای گرم منفی بود.
نتیجه گیری: نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد که از جدایههای لاکتیکی لبنی بومی و متابولیتهای بدست آمده از آنها میتوان به عنوان نگهدارنده زیستی و یا در ترکیب با نگهدارندهای سنتزی در صنعت غذا و دارو استفاده نمود.
مواد و روشها: در این پژوهش، ابتدا جدایههای لاکتیکی با روش واکنش زنجیره ای پلیمراز (PCR) مورد شناسایی قرار گرفتند و سپس به‌منظور ارزیابی خاصیت ضد میکروبی محیط مایع مصرف شده بدون سلول کشت (CFSM) از روش میکرودایلوشن استفاده گردید.
یافتهها: توالییابی محصولات واکنش زنجیره ای پلیمراز نشان داد که گونههای شناسایی شده مربوط به جنسهای لاکتوباسیلوس و انتروکوکوس بودند. نتایج حاصل از ارزیابی خاصیت ضد باکتریایی محیط مایع مصرف شده بدون سلول کشت بر رشد باکتریهای بیماریزا گرم مثبت نشان داد که همه جدایهها قابلیت جلوگیری از رشد این دو پاتوژن را داشتند و درصد بازدارندگی آنها از ۳۸/۲۱ -۱۴/۸۶ درصد متغیر بود. نتایج اثرات بازدارندگی جدایههای لاکتیکی بر رشد دو باکتری گرم منفی اشریشیا کلای و سالمونلا انتریکا نیز نشان داد که میزان بازدارندگی جدایههای مورد بررسی به ترتیب از ۹۳/۳۶-۴۲/۲ درصد و ۹۷/۳۱-۱۴/۱ درصد متغیر بود. مقایسه میزان بازدارندگی جدایههای لاکتیکی بر روی باکتریهای بیماریزا نشان داد که میزان بازدارندگی تمام جدایههای لاکتیکی مورد بررسی بر روی باکتریهای گرم مثبت به شکل معنیداری (P<۰.۰۵) بیشتر از تأثیر آنها بر روی باکتریهای گرم منفی بود.
نتیجه گیری: نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد که از جدایههای لاکتیکی لبنی بومی و متابولیتهای بدست آمده از آنها میتوان به عنوان نگهدارنده زیستی و یا در ترکیب با نگهدارندهای سنتزی در صنعت غذا و دارو استفاده نمود.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
میکروب شناسی مواد غذایی
دریافت: 1398/5/17 | پذیرش: 1398/9/9 | انتشار الکترونیک: 1398/10/20
دریافت: 1398/5/17 | پذیرش: 1398/9/9 | انتشار الکترونیک: 1398/10/20
فهرست منابع
1. Scallan E, Griffin PM, Angulo FJ, Tauxe RV, Hoekstra RM. Foodborne illness acquired in the United States-unspecified agents. Emerging Infect. Dis. 2011; 17:16. [DOI:10.3201/eid1701.P21101] [PMID] [PMCID]
2. Dewey-Mattia D, Manikonda K, Hall AJ, Wise ME, Crowe SJ. Surveillance for foodborne disease outbreaks-United States, 2009-2015. MMWR Surveillance Summaries. 2018 Jul 27;67(10):1.. [DOI:10.15585/mmwr.ss6710a1] [PMID] [PMCID]
3. Upadhayay UPPDD, Evum PCVVV. Food-home Pathogens of Animal Origin-Diagnosis, Prevention, Control and Their Zoonotic Significance: A Review. Pak J Biol Sci. 2013; 16: 1076-85. [DOI:10.3923/pjbs.2013.1076.1085] [PMID]
4. Control CfD, Prevention. Multistate outbreak of Salmonella serotype typhimurium infections associated with drinking unpasteurized milk--Illinois, Indiana, Ohio, and Tennessee, 2002-2003. MMWR Morbidity and mortality weekly report. 2003; 52: 613.
5. Control CfD, Prevention. Preliminary FoodNet data on the incidence of infection with pathogens transmitted commonly through food--selected sites, United States, 2003. MMWR Morbidity and mortality weekly report. 2004; 53: 338.
6. Oliver SP, Jayarao BM, Almeida RA. Foodborne pathogens, mastitis, milk quality, and dairy food safety. InNMC Annual Meeting Proceedings 2005 (Vol. 1).
7. Rocourt J, Moy G, Vierk K, Schlundt J. The present state of foodborne disease in OECD countries. World Heath Organization: Geneva.
8. Medeiros LC, Hillers VN, Kendall PA, Mason A. Food safety education: what should we be teaching to consumers. J Nutr Educ. 2001; 33: 108-13.
https://doi.org/10.1016/S1499-4046(06)60174-7 [DOI:10.1016/S1499-4046(06)60067-5]
9. Cortés-Zavaleta O, López-Malo A, Hernández-Mendoza A, García H. Antifungal activity of lactobacilli and its relationship with 3-phenyllactic acid production. Int J Food Microbiol. 2014; 173: 30-5. [DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2013.12.016] [PMID]
10. Muhialdin BJ, Hassan Z. Screening of lactic acid bacteria for antifungal activity against Aspergillus oryzae. Am J Appl Sci. 2011; 8: 447. [DOI:10.3844/ajassp.2011.447.451]
11. Pawlowska AM, Zannini E, Coffey A, Arendt EK. 5" Green Preservatives": Combating Fungi in the Food and Feed Industry by Applying Antifungal Lactic Acid Bacteria. Adv Food Nutr Res. 2012; 66: 217. [DOI:10.1016/B978-0-12-394597-6.00005-7] [PMID]
12. Li H, Zhang S, Lu J, Liu L, Uluko H, Pang X, et al. Antifungal activities and effect of Lactobacillus casei AST18 on the mycelia morphology and ultrastructure of Penicillium chrysogenum. Food Control. 2014; 43: 57-64. [DOI:10.1016/j.foodcont.2014.02.045]
13. Ahmadova A, Todorov SD, Hadji-Sfaxi I, Choiset Y, Rabesona H, Messaoudi S, et al. Antimicrobial and antifungal activities of Lactobacillus curvatus strain isolated from homemade Azerbaijani cheese. Anaerobe. 2013; 20: 42-9. [DOI:10.1016/j.anaerobe.2013.01.003] [PMID]
14. Lauzon, H.L. 2002. Development of biological control for Listeria spp.. in the manufacture of cold -smoked fish. Project Report. Icelandic Fisheries Laboratories.
15. Naidu, S.A. 2000. Natural food antimicrobial system, (1st ed.) CRC press. Washington, USA . [DOI:10.1201/9781420039368] [PMCID]
16. Leite AMO, Miguel MAL, Peixoto RS, Ruas-Madiedo P, Paschoalin VMF, Mayo B, Delgado S. Probiotic potential of selected lactic acid bacteria strains isolated from Brazilian kefir grains. J Dairy Sci. 2015; 6: 3622-3632. [DOI:10.3168/jds.2014-9265] [PMID]
17. Méndez-Vilas A, editor. Microbial pathogens and strategies for combating them: science, technology and education. Formatex Research Center; 2013.
18. Haghshenas B, Nami Y, Abdullah N, Radiah D, Rosli R. Yari Khosroushahi A. Anti-proliferative effects of Enterococcus strains isolated from fermented dairy products on different cancer cell lines. J Funct Foods. 2014; 11: 363-374. [DOI:10.1016/j.jff.2014.10.002]
19. Tulumoğlu S, Kaya HI, Simsek o. Probiotic characteristics of Lactobacillus fermentum strains isolated from tulum cheese. Anaerobe. 2014; 30: 120-125. [DOI:10.1016/j.anaerobe.2014.09.015] [PMID]
20. Patil MM, Pal A, Anand T, Ramana K.V .Isolation and characterization of Lactic acid bacteria from curd and cucumber. Indian J Biotechnol. 2010; 9, 166-172.
21. Leroy F, De Vuyst L. Lactic acid bacteria as functional starter cultures for the food fermentation industry. Trends Food Sci Tech. 2004; 15: 67-78. [DOI:10.1016/j.tifs.2003.09.004]
22. Casaburi A, Martino VD, Ferranti P, Picariello L, Villani F. Technological properties and bacteriocins production by Lactobacillus curvatus 54M16 and its use as starter culture for fermented sausage manufacture. Food Control. 2016; 59: 31-45. [DOI:10.1016/j.foodcont.2015.05.016]
23. Sabir F, Beyatli Y, Cumhur C. Assessment of potential probiotic properties of lactobacillus spp.., lactococcus spp.., and pediococcus spp. strains isolated from kefir. J Food Sci. 2010; 759: 568-573. [DOI:10.1111/j.1750-3841.2010.01855.x] [PMID]
24. Angmo K, Kumari A, Savitri A, Bhalla TC. Probiotic characterization of lactic acid bacteria isolated from fermented foods and beverage of ladakh. Food Sci Tech. 2016; 66: 428-432. [DOI:10.1016/j.lwt.2015.10.057]
25. Assohoun-Djeni, NMC, Djeni NT, Messaoudi S, Lhomme E, Koussemon-Camara M, Ouassa T, et al. Biodiversity, dynamics and antimicrobial activity of lactic acid bacteria involved in the fermentation of maize flour for doklu production in Côte d'Ivoire. Food Control. 2016; 62: 397-404. [DOI:10.1016/j.foodcont.2015.09.037]
26. Caballero B, Finglas P, Toldrá F. Encyclopedia of food and health. Academic Press; 2015 Aug 26.
27. Schaechter M. Encyclopedia of microbiology. 5th ed. Academic Press; 2011 Jan 14; 85-90.
28. Schillinger U, Guigas C, Holzapfel, WH. In vitro adherence and other properties of lactobacilli used in probiotic yoghurt-like products. Int Dairy J. 2005; 15: 1289-1297. [DOI:10.1016/j.idairyj.2004.12.008]
29. Fernandez M, Boris S, Barbes C. Probiotic properties of human lactobacilli strains to be used in the gastrointestinal tract. J Appl Microbiol. 2003; 94: 449-455. [DOI:10.1046/j.1365-2672.2003.01850.x] [PMID]
30. Poutanen K, Flander L, Katina K.. Sourdough and cereal fermentation in a nutritional perspective. Food Microbiol. 2009; 26: 693-699. [DOI:10.1016/j.fm.2009.07.011] [PMID]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |