سال 17، شماره 1 - ( بهمن - اسفند 1401 )
جلد 17 شماره 1 صفحات 57-50 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Mireshghi N, Jafari Z, Shojaei Sadi B. Molecular study of Shigella dysenteriae Aminoglycoside Resistance Genes Isolated from Children and its Expression Under the Influence of Curcumin Nanoparticle. Iran J Med Microbiol 2023; 17 (1) :50-57
URL: http://ijmm.ir/article-1-1776-fa.html
URL: http://ijmm.ir/article-1-1776-fa.html
میرعشقی نگین سادات، جعفری زهره، شجاعی سعدی بهروز. بررسی مولکولی ژن های مقاومت آمینوگلیکوزیدی شیگلا دیسانتری جدا شده از کودکان و بیان آن تحت تأثیر نانو ذرات کورکومین. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1401; 17 (1) :50-57
1- دانشجوی کارشناسی ارشد میکروب شناسی، گروه میکروب شناسی، دانشکده علوم، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
2- استادیار، گروه میکروب شناسی، دانشکده علوم، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران ، jafarizohreh264@gmail.com
3- مربی، گروه میکروب شناسی، دانشکده علوم، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
2- استادیار، گروه میکروب شناسی، دانشکده علوم، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران ، jafarizohreh264@gmail.com
3- مربی، گروه میکروب شناسی، دانشکده علوم، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
چکیده: (1738 مشاهده)
زمینه و اهداف: شیگلا عامل ایجاد شیگلوز در جهان است. درمان آنتی بیوتیکی در این باکتری مهم است، اما اخیرا گونه های شیگلا حاوی ژن های aph، aadE، aacA-aphD نسبت به آمینوگلیکوزیدها مقاومت نشان داده و روند درمان را با مشکل مواجه کرده اند. بنابراین، هدف از این مطالعه بررسی مولکولی ژن‌های مقاومت آمینوگلیکوزید شیگلا دیسانتریه جدا شده از کودکان و بیان آن تحت تأثیر نانوذرات کورکومین است.
مواد و روش کار: در این مطالعه ۶۰ نمونه اسهال جمع آوری شده از بیمارستان های تهران در سال ۱۴۰۱ مورد استفاده قرار گرفت. جدایه‌های شیگلا دیسانتری با آزمایش‌های بیوشیمیایی و میکروبی شناسایی شدند. وجود ژن‌های aadE،aacA-aphD و aph با روشMultiplex-PCR تأیید شد. سپس ازReal-time PCR برای بررسی بیان ژن aadE در حضور نانوذرات کورکومین استفاده شد.
یافته ها: از ۶۰ نمونه اسهالی مورد بررسی، ۱۲ سویه (۴۰ درصد) اسهال خونی شیگلا با آزمایش‌های بیوشیمیایی شناسایی شد. ۱۰ ایزوله (۸۳/۳ درصد) حامل ژن aadE، ۶ ایزوله حامل ژن aacA_aphD و ۱ ایزوله حامل ژن aph بودند. مقدار Sub MIC نانوذرات کورکومین در بیان ژن، ۱۲۸میکروگرم بر میلی‌لیتر و تغییر برابری برای این ژن ۱/۰۳- است.
نتیجه‌گیری: با توجه به وجود ژن aadE در ۸۳/۳ درصد از جدایه‌ها، بررسی وجود این ژن در ارائه مدل درمانی مناسب برای بیماران آلوده به این باکتری و همچنین بیان ژن aadE به‌عنوان بیشترین اهمیت حائز اهمیت است. مشترک بیان ژن مقاومت به آمینوگلیکوزید در حضور نانوذرات کورکومین به مقدار نسبی کاهش یافت. بنابراین، نانوذرات کورکومین می‌تواند جایگزین مناسبی برای درمان سویه‌های حامل ژن‌های مقاومت آمینوگلیکوزید باشد.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
باکتری شناسی پزشکی
دریافت: 1401/3/17 | پذیرش: 1401/5/21 | انتشار الکترونیک: 1401/10/30
دریافت: 1401/3/17 | پذیرش: 1401/5/21 | انتشار الکترونیک: 1401/10/30
فهرست منابع
1. Jomehzadeh N, Afzali M, Ahmadi K, Salmanzadeh S, Mehr F. Antimicrobial resistance patterns and prevalence of integrons in Shigella species isolated from children with diarrhea in southwest Iran. Asian Pac J Trop Med. 2021;14(2):78-82. [DOI:10.4103/1995-7645.281529]
2. Amini K, Konkori M. Identification of Broad-Spectrum Beta-lactamase CTX-M-2, CTX-M-8, and Ampc-dependent CMY Genes in Shigella sonnei Isolated from Pediatric Diarrhea Specimens by Multiplex-PCR and Antibiotic Resistance Pattern Determination. Iran J Med Microbiol. 2020;14(5):501-11. [DOI:10.30699/ijmm.14.5.501]
3. Zhi S, Parsons BD, Szelewicki J, Yuen YTK, Fach P, Delannoy S, et al. Identification of Shiga-Toxin-Producing Shigella Infections in Travel and Non-Travel Related Cases in Alberta, Canada. Toxins [Internet]. 2021; 13(11). [DOI:10.3390/toxins13110755] [PMID] [PMCID]
4. Ranjbar R, Soltan Dallal MM, Talebi M, Pourshafie MR. Increased isolation and characterization of Shigella sonnei obtained from hospitalized children in Tehran, Iran. J Health Popul Nutr. 2008;26(4):426-30. [DOI:10.3329/jhpn.v26i4.1884] [PMID] [PMCID]
5. Ke X, Gu B, Pan S, Tong M. Epidemiology and molecular mechanism of integron-mediated antibiotic resistance in Shigella. Arch Microbiol. 2011;193(11):767. [DOI:10.1007/s00203-011-0744-3] [PMID]
6. Kahsay AG, Muthupandian S. A review on Sero diversity and antimicrobial resistance patterns of Shigella species in Africa, Asia and South America, 2001-2014. BMC Res Notes. 2016;9(1):422. [DOI:10.1186/s13104-016-2236-7] [PMID] [PMCID]
7. Afshari N, Bakhshi B, Mahmoudi aznaveh A, Fallah F, Rahbar M, Rafiei Tabatabaei S. Investigation of prevalence of Shigella sonnei in children with diarrhea admitted to two hospital Emam Khomeini and Milad in Tehran in 1391 with Antimicrobial susceptibility of isolates. Iran J Med Microbiol. 2016;10(2):16-22.
8. Tran Van Nhieu G, Sansonetti PJ. Mechanism of Shigella entry into epithelial cells. Curr Opin Microbiol. 1999;2(1):51-5. [DOI:10.1016/S1369-5274(99)80009-5] [PMID]
9. Nasrollahi Boroujeni F, Deldar AA. The Study of the Stable Expression of IpaB, the Virulence Factor in Shigella Sonnei, in Terms of Simultaneous Expression of Chaperone IpgC. Iran J Med Microbiol. 2018;12(4):260-8. [DOI:10.30699/ijmm.12.4.260]
10. Muthuirulandi Sethuvel DP, Veeraraghavan B, Vasudevan K, Devanga Ragupathi NK, Murugan D, Walia K, et al. Complete genome analysis of clinical Shigella strains reveals plasmid pSS1653 with resistance determinants: a triumph of hybrid approach. Gut Pathog. 2019;11(1):55. [DOI:10.1186/s13099-019-0334-5] [PMID] [PMCID]
11. Ranjbar R, Farahani A. Shigella: Antibiotic Resistance Mechanisms And New Horizons For Treatment. Infect Drug Resist. 2019;12:3137-67. [DOI:10.2147/IDR.S219755] [PMID] [PMCID]
12. Soleimani N. Molecular Biology of Aminoglycoside and Relationship of Aminoglycoside Modifying Enzymes with Altering Resistance. Alborz Univ Med J. 2017;6(4):227-40. [DOI:10.29252/aums.6.4.227]
13. Silva PR, Palma JM, Souza NR, de Moura HM, Perecmanis S, et al. Isolation and antimicrobial resistance of Campylobacter jejuni and Campylobacter coli found in chilled chicken carcasses in the Federal District Region and surrounding areas. Semina: Ciências Agrárias. 2019; 40(5Supl1):2247-60. [DOI:10.5433/1679-0359.2019v40n5Supl1p2247]
14. Garneau Tsodikova S, Labby KJ. Mechanisms of Resistance to Aminoglycoside Antibiotics: Overview and Perspectives. Med Chem Comm. 2016;7(1):11-27. [DOI:10.1039/C5MD00344J] [PMID] [PMCID]
15. Chopra H, Dey PS, Das D, Bhattacharya T, Shah M, Mubin S, et al. Curcumin Nanoparticles as Promising Therapeutic Agents for Drug Targets. Molecules [Internet]. 2021; 26(16):[4998 p.]. [DOI:10.3390/molecules26164998] [PMID] [PMCID]
16. Gopal J, Muthu M, Chun SC. One-step, ultrasonication-mobilized, solvent-free extraction/synthesis of nanocurcumin from turmeric. RSC Adv. 2015;5(60):48391-8. [DOI:10.1039/C5RA06002H]
17. Rai M, Ingle AP, Pandit R, Paralikar P, Anasane N, Santos CAD. Curcumin and curcumin-loaded nanoparticles: antipathogenic and antiparasitic activities. Expert Rev Anti Infect Ther. 2020;18(4):367-79. [DOI:10.1080/14787210.2020.1730815] [PMID]
18. Sharifi S, Fathi N, Memar MY, Hosseiniyan Khatibi SM, Khalilov R, Negahdari R, et al. Antimicrobial activity of curcumin nanoformulations: New trends and future perspectives. Phytother Res. 2020;34(8):1926-46. [DOI:10.1002/ptr.6658] [PMID]
19. Kareem SM, Mahmood SS, Hindi NK. Effects of Curcumin and Silymarin on the Shigella dysenteriae and Campylobacter jejuni In vitro. J Gastrointest Cancer. 2020;51(3):824-8. [DOI:10.1007/s12029-019-00301-1] [PMID]
20. Werner G, Hildebrandt B, Witte W. Aminoglycoside-Streptothricin Resistance Gene Cluster aadE-sat4-aphA-3 Disseminated among Multiresistant Isolates of Enterococcus faecium. Antimicrob Agents Chemother. 2001;45(11):3267-9. [DOI:10.1128/AAC.45.11.3267-3269.2001] [PMID] [PMCID]
21. Udou T. Dissemination of nosocomial multiple-aminoglycoside-resistant Staphylococcus aureus caused by horizontal transfer of the resistance determinant (aacA/aphD) and clonal spread of resistant strains. Am J Infect Control. 2004;32(4):215-9. [DOI:10.1016/j.ajic.2003.11.002] [PMID]
22. Gião J, Leão C, Albuquerque T, Clemente L, Amaro A. Antimicrobial Susceptibility of Enterococcus Isolates from Cattle and Pigs in Portugal: Linezolid Resistance Genes optrA and poxtA. Antibiotics [Internet]. 2022; 11(5). [DOI:10.3390/antibiotics11050615] [PMID] [PMCID]
23. Bhawana, Basniwal RK, Buttar HS, Jain VK, Jain N. Curcumin Nanoparticles: Preparation, Characterization, and Antimicrobial Study. J Agric Food Chem. 2011;59(5):2056-61. [DOI:10.1021/jf104402t] [PMID]
24. Alizadeh Sarvandani S, Amini K, Saffarian P. Evaluation of antimicrobial activity of Curcumin nanoparticles on the gene expression of the enterococcal surface protein, Esp, involved in biofilm formation of Enterococcus Faecalis. Razi J Med Sci. 2019;26(9):39-46.
25. Panahi Y, Monnazah MA, Vafaei G. Study of the Use of Dimethyl Sulfoxide (Dmso) As A Solvent in the Administration of Antiepileptic Drugs. Stud Med Sci. 2020;31(4):316-24.
26. Sayers EW, Barrett T, Benson DA, Bolton E, Bryant SH, et al. Database resources of the National Center for Biotechnology Information. Nucleic Acids Res. 2018;46(D1):D8-d13.
27. Vaziri F, Peerayeh SN, Nejad QB, Farhadian A. The prevalence of aminoglycoside-modifying enzyme genes (aac (6′)-I, aac (6′)-II, ant (2″)-I, aph (3′)-VI) in Pseudomonas aeruginosa. Clin Sci. 2011;66(9):1519-22.
28. Strommenger B, Kettlitz C, Werner G, Witte W. Multiplex PCR Assay for Simultaneous Detection of Nine Clinically Relevant Antibiotic Resistance Genes in Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol. 2003;41(9):4089-94. [DOI:10.1128/JCM.41.9.4089-4094.2003] [PMID] [PMCID]
29. Moniri R, Farahani RK, Shajari G, Shirazi MN, Ghasemi A. Molecular epidemiology of aminoglycosides resistance in acinetobacter spp. With emergence of multidrug-resistant strains. Iran J Public Health. 2010;39(2):63-8.
30. Zhang Z, Liao L, Moore J, Wu T, Wang Z. Antioxidant phenolic compounds from walnut kernels (Juglans regia L.). Food Chem. 2009;113(1):160-5. [DOI:10.1016/j.foodchem.2008.07.061]
31. De R, Kundu P, Swarnakar S, Ramamurthy T, Chowdhury A, Nair GB, et al. Antimicrobial Activity of Curcumin against Helicobacter pylori Isolates from India and during Infections in Mice. Antimicrob Agents Chemother. 2009;53(4):1592-7. [DOI:10.1128/AAC.01242-08] [PMID] [PMCID]
32. Shariati A, Asadian E, Fallah F, Azimi T, Hashemi A, Yasbolaghi Sharahi J, et al. Evaluation of Nano-curcumin effects on expression levels of virulence genes and biofilm production of multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa isolated from burn wound infection in Tehran, Iran. Infect Drug Resist. 2019;12:2223-35. [DOI:10.2147/IDR.S213200] [PMID] [PMCID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
