سال 16، شماره 2 - ( فروردین - اردیبهشت 1400 )                   جلد 16 شماره 2 صفحات 126-116 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


1- گروه آسیب شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران
2- گروه آسیب شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران ، m.mehdinejad1017@gmail.com
3- بخش آسیب شناسی ، بیمارستان رسول اکرم (ص)، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران
چکیده:   (507 مشاهده)

زمینه و اهداف:  گروه بزرگی از ژن‌های بیان شده مرتبط با بتالاکتامازهای وسیع الطیف (ESBL) و AmpC در ایجاد مقاومت آنتی‌ بیوتیکی در باکتری‌ های مختلف نقش دارند. شناسایی این ژن ها و ارزیابی جایگاه آنها در تعیین الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی بسیار مهم است. این مطالعه با هدف تعیین انواع ژنتیکی در باسیل های گرم منفی تولید کننده بتالاکتامازهای وسیع الطیف، بتالاکتاماز AmpC و مقاومت آنتی بیوتیکی مرتبط انجام شد.
مواد و روش کار:  این پژوهش مقطعی بر روی نمونه‌های بالینی بیماران بستری در بیمارستان رسول اکرم (ص) تهران در سال‌های ۱۳۹۸ و ۱۳۹۹ انجام شد. واریانت های ژنتیکی با روش واکنش زنجیره ی پلیمر از (PCR) ارزیابی شدند. الگوی مقاومت آنتی بیوتیک ها توسط روش دیسک دیفیوژن تعیین شد.
یافته ها:  از ۸۰ ایزوله ای که  بتالاکتاماز وسیع الطیف (ESBL) وبتالاکتاماز AmpC تولید کردند، ۷۵ مورد تولید کننده ESBL و ۵ مورد هم تولید کننده مشترک ESBL و AmpC بودند. شایعترین سویه های کشت شده شامل اشریشیا کلی (۶۱/۲ درصد) و کلبسیلا پنومونیه (۳۱/۳ درصد) بود. بیشترین مقاومت آنتی بیوتیکی در تولیدکنندگان ESBL مربوط به سفوتاکسیم، تری متوپریم-سولفامتوکسازول و سفازولین و کمترین میزان مقاومت مربوط به کولیستین، سفوکسیتین و سفتریاکسون بود. فراوانی کلی ژن‌های شایع باسیل‌های گرم منفی مولد بتالاکتاماز وسیع الطیف (ESBL)، ((%۷۶/۰ blaCTX-M، (۴۶/۷%)TEMbla و (۲۶/۷%)HVSbla بود، در حالی که موارد  چند ژنی نیز در ۴۹/۳% مشاهده شد. سطح مقاومت دارویی به ایمی پنم، آمیکاسین وسفتازیدیم در افرادی که دارای ژن HVSbla بودند به طور قابل توجهی بالاتر از سایر موارد بود.
نتیجه‌گیری:  شایع ترین سویه های کشت شده شامل اشریشیا کلی و کلبسیلا پنومونیه بود و بیان چند ژنی مشاهده شد. تشخیص ژن HVSbla با افزایش مقاومت آنتی بیوتیکی به ایمی پنم، آمیکاسین و سفتازیدیم مرتبط است.

متن کامل [PDF 979 kb]   (96 دریافت)    
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: میکروب شناسی مولکولی
دریافت: 1400/6/16 | پذیرش: 1400/10/25 | انتشار الکترونیک: 1400/11/21

فهرست منابع
1. Dancer SJ, Coyne M, Robertson C, Thomson A, Guleri A, Alcock S. Antibiotic use is associated with resistance of environmental organisms in a teaching hospital. J Hosp Infect; 2006; 62(2):200-6. [DOI:10.1016/j.jhin.2005.06.033] [PMID]
2. Klugman KP, Madhi SA. Emergence of drug resistance: impact on bacterial meningitis. Infect Dis Clin North Am. 1999;13(3): 637-646. [DOI:10.1016/S0891-5520(05)70098-2]
3. Jalalpoor SH, Abousaidi H. Survey Role and Important of Surfaces Structure and β-lactamase of Bacillus cereus in Drug Resistant. J Microb World. 2009; 2(3): 169-76.
4. Massova I, Mobashery S. Kinship and diversification of bacterial penicillin-binding proteins and β-lactamases. Antimicrob Agents Chemother. 1998; 42(1):1-17. [DOI:10.1128/AAC.42.1.1] [PMID] [PMCID]
5. Fedarovich A, Nicholas RA, Davies C.The role of the β5-α11 loop in the active-site dynamics of acylated penicillin-binding protein A from Mycobacterium tuberculosis. J Mol Biol. 2012; 418(5): 316-30. [DOI:10.1016/j.jmb.2012.02.021] [PMID] [PMCID]
6. Zapun A,Contreras-Martel C,Vernet T. Penicillin-binding proteins and β-lactam resistance. FEMS Microbiol Rev. 2008; 32(2):361-85. [DOI:10.1111/j.1574-6976.2007.00095.x] [PMID]
7. Delcour AH. Outer membrane permeability and antibiotic resistance. Biochim Biophys Acta Proteins Proteom. 2009; 1794(5):808-16. [DOI:10.1016/j.bbapap.2008.11.005] [PMID] [PMCID]
8. Jalalpoor S, Kermanshahi RK, Noohi AS, Isfahani HZ. The Prevalence of Nano-structure Surface Layer in Bacillus Cereus Strains Isolated from Staff Hands and Hospital Surfaces. J Isfahan Med School. 2009;27(100):632-45.
9. Samaha-Kfoury JN, Araj GF. Recent developments in β lactamases and extended spectrum β lactamases, BMJ. 2003; 327(7425):1209-13. [DOI:10.1136/bmj.327.7425.1209] [PMID] [PMCID]
10. Parija S. Textbook of Microbiology & Immunology. 2th ed. Elsevier Health Sciences; 2014.
11. Thomson KS. Extended-spectrum-β-lactamase, AmpC, and carbapenemase issues. J Clin Microbiol. 2010; 48(4):1019-25. [DOI:10.1128/JCM.00219-10] [PMID] [PMCID]
12. Li X-Z, Nikaido H. Efflux-mediated drug resistance in bacteria. Drugs. 2009;69(12):1555-623. [DOI:10.2165/11317030-000000000-00000] [PMID] [PMCID]
13. Bush K, Jacoby GA. Updated functional classification of β-lactamases. Antimicrob Agents Chemother. 2010; 54(3):969-76. [DOI:10.1128/AAC.01009-09] [PMID] [PMCID]
14. Pitout JD. Infections with extended-spectrum β-lactamase-producing Enterobacteriaceae. Drugs. 2010; 70(3): 313-33. [DOI:10.2165/11533040-000000000-00000] [PMID]
15. Ambler RP, et al.A standard numbering scheme for the class A β-lactamases. Biochem J. 1991; 276(Pt 1): 269-70. [DOI:10.1042/bj2760269] [PMID] [PMCID]
16. Jacoby GA. AmpC β-lactamases. Clin Microbiol Rev. 2009; 22(1): 161-82. [DOI:10.1128/CMR.00036-08] [PMID] [PMCID]
17. Chew KL , Lin RT, Teo JW. Klebsiella pneumoniae in Singapore: hypervirulent infections and the carbapenemase threat. Front Cell Infect Microbiol. 2017;7: 515. [DOI:10.3389/fcimb.2017.00515] [PMID] [PMCID]
18. Cho JC, Fiorenza MA, Estrada SJ. Ceftolozane/Tazobactam: A Novel Cephalosporin/β-Lactamase Inhibitor Combination. Pharmacotherapy. 2015; 35(7):701-15. [DOI:10.1002/phar.1609] [PMID]
19. Geisinger E, Isberg RR. Interplay between antibiotic resistance and virulence during disease promoted by multidrug-resistant bacteria. J Infect Dis. 2017; 215(suppl_1):S9-17. [DOI:10.1093/infdis/jiw402] [PMID] [PMCID]
20. D'Andrea MM, Arena F, Pallecch L, Rossolini GM. CTX-M-type β-lactamases: a successful story of antibiotic resistance. Int J Med Microbiol. 2013; 303(6-7): 305-17. [DOI:10.1016/j.ijmm.2013.02.008] [PMID]
21. Levy SB. Factors impacting on the problem of antibiotic resistance. J Antimicrob Chemother. 2002; 49(1):25-30. [DOI:10.1093/jac/49.1.25] [PMID]
22. Rajivgandhi G, Maruthupandy M, Ramachandran G, Priyanga M, Manoharan N. Detection of ESBL genes from ciprofloxacin resistant Gram negative bacteria isolated from urinary tract infections. J Front Lab Med. 2018;2(1):5-13 [DOI:10.1016/j.flm.2018.01.001]
23. Gunjan G, Vibhor T, Purva M. Detection of AmpC betalactamases in gram negative bacteria. J Lab Physicians. 2014;6(01):001-6 [DOI:10.4103/0974-2727.129082] [PMID] [PMCID]
24. Gundran RS et al. Prevalence and distribution of bla CTX-M, bla SHV, bla TEM genes in extended-spectrum β-Lactamase-producing E. coli isolates from broiler farms in the Philippines. BMC Vet Res. 2019; 15(1):1-8. [DOI:10.1186/s12917-019-1975-9] [PMID] [PMCID]
25. Pishtiwan AH, Khadija K.M. Prevalence of blaTEM, blaSHV, and blaCTX-M genes among ESBL-producing Klebsiella pneumoniae and Escherichia coli isolated from thalassemia patients in Erbil, Iraq Mediterr J Hematol Infect Dis. 2019;11(1). [DOI:10.4084/mjhid.2019.041] [PMID] [PMCID]
26. Farzi S,Ranjbar R,Niakan M,Ahmadi MH. Molecular Characterization of Antibiotic Resistance Associated with TEM and CTX-M ESBL in Uropathogenic E. coli Strains Isolated from Outpatients. Iran J Pathol. 2021; 16(4):386-91 [DOI:10.30699/ijp.2021.521669.2556] [PMID] [PMCID]
27. Roshdi Maleki M, Taghinejad J. Prevalence of Extended-spectrum Beta-lactamases (ESBL) Types blaTEM and blaSHV in Klebsiella pneumoniae Strains Isolated from Clinical Samples by
28. PCR in Miandoab, West Azerbaijan. Iran J Med Microbiol. 2021; 15(4): 458-64. [DOI:10.30699/ijmm.15.4.458]
29. Bajpai T, Pandey M, Varma M, Bhatambare G. Prevalence of TEM, SHV, and CTX-M Beta-Lactamase genes in the urinary isolates of a tertiary care hospital. Avicenna J Med. 2017; 7(1):12. [DOI:10.4103/2231-0770.197508] [PMID] [PMCID]
30. Ghaima K. Distribution of extended spectrum beta-lactamase (ESBL) genes among Acinetobacter baumannii isolated from burn infections. MOJ Cell Sci Rep. 2018; 5(3):42-6. [DOI:10.15406/mojcsr.2018.05.00112]
31. Amini K, Konkori M. Identification of Broad-Spectrum Beta-lactamase CTX-M-2, CTX-M-8, and Ampc-dependent CMY Genes in Shigella sonnei Isolated from Pediatric Diarrhea Specimens by Multiplex-PCR and Antibiotic Resistance Pattern Determination. Iran J Med Microbiol. 2020; 14(5): 501-11. [DOI:10.30699/ijmm.14.5.501]
32. Alfaresi MS, Elkoush AA, Alshehhi HM, Abdulsalam AI. Molecular characterization and epidemiology of extended-spectrum beta-lactamase-producing Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae isolates in the United Arab Emirates. Med Princ Pract. 2011; 20(2):177-80. [DOI:10.1159/000319912] [PMID]
33. Koshesh M, Mansouri S,Hashemizadeh Z, Kalantar-Neyestanaki. Identification of extended-spectrum β-lactamase genes and ampc-β-lactamase in clinical isolates of escherichia coli recovered from patients with urinary tract infections in Kerman, Iran. Arch Pediatr Infect Dis. 2017; 5(2): e37968. [DOI:10.5812/pedinfect.37968]

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.