سال 15، شماره 6 - ( آذر - دی 1400 )                   جلد 15 شماره 6 صفحات 675-658 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


1- گروه میکروبشناسی و ایمنی شناسی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران
2- گروه میکروبشناسی و ایمنی شناسی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران ، ryahya@ut.ac.ir
3- گروه علوم آزمایشگاهی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد بروجرد، بروجرد، ایران
چکیده:   (1166 مشاهده)

زمینه و اهداف:  سالمونلا تیفی یک پاتوژن انسانی است که موجب تحریک سیستم ایمنی انسان و ایجاد تغییرات در سطح بیان ژن‌ها در مسیر بیماری‌زایی اش می‌شود. لذا هدف این مطالعه، بررسی تغییرات بیان ژن سایتوکاین‌های IFN-γ و TNF-α منوسیت‌های شبه ماکروفاژ خون انسان در برخورد با نمونه‌های بالینی و استاندارد سالمونلا تیفی در شرایط برون تنی است.
مواد و روش کار:  در این مطالعه مقطعی-توصیفی مدفوع ۶۰ بیمار مبتلا به گاستروآنتریت کشت داده شده و برای تشخیص سالمونلا از تست‌های بیوشیمیایی استفاده شد. همچنین از افراد نمونه خون وریدی برای جداسازی peripheral blood mononuclear cell (PBMC) گرفته شد و PBMCها در محیط کشت، حاوی تیمارهای ۴×۱۰۳ cfu/mL از سالمونلا تیفی پاتوژن و استاندارد کشت شدند. تست سمیت سلولی برای تعیین غلظت‌ها نیز انجام شد. در نهایت بیان کمی ژن‌های ifn-γ و tnf-α سنجیده شد و نتایج با آزمون‌های آماری، تحلیل گردید.
یافته ها:  نتایج تست سمیت سلولی، استفاده از غلظت  ۴×۱۰۳ cfu/mL  سالمونلا تیفی را برای تیمار در محبط کشت مجاز نشان داد که استفاده شد. تغییرات نسبی بیان ژن سایتوکاین‌های tnf-α و ifn-γ در PBMC‌های تیمار شده با سویۀ پاتوژن و سویۀ  ۱۴۰۲۸ATCC به ترتیب افزایش معناداری نسبت به نمونه کنترل داشت(۰/۰۰۰۱=P، ۰/۰۱۹۸= P).
نتیجه‌گیری:  بیان افزایش یافته و معنی‌دار سایتوکاین‌های ifn-γ و tnf-α در گروه نمونه تیمار شده با سویه پاتوژن و سویۀ ATCC نشان دهنده پلاریزاسیون ماکروفاژهای تحریک شده با  سالمونلا تیفی در شرایط آزمایشگاهی است.

متن کامل [PDF 1247 kb]   (312 دریافت)    
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: میکروب شناسی مولکولی
دریافت: 1400/5/6 | پذیرش: 1400/8/14 | انتشار الکترونیک: 1400/9/17

فهرست منابع
1. Coburn B, Grassl GA, Finlay BB. Salmonella, the host and disease: a brief review. Immunol Cell Biol. 2007;85(2):112-8. [DOI:10.1038/sj.icb.7100007] [PMID]
2. Herrero-Fresno A, Olsen JE. Salmonella Typhimurium metabolism affects virulence in the host - A mini-review. Food Microbiol. 2018;71:98-110. [DOI:10.1016/j.fm.2017.04.016] [PMID]
3. Ramachandran G, Panda A, Higginson EE, Ateh E, Lipsky MM, Sen S, et al. Virulence of invasive Salmonella Typhimurium ST313 in animal models of infection. PLoS Negl Trop Dis. 2017;11(8):e0005697. [DOI:10.1371/journal.pntd.0005697] [PMID] [PMCID]
4. Sun H, Wan Y, Du P, Bai L. The Epidemiology of Monophasic Salmonella Typhimurium. Foodborne Pathog Dis. 2020;17(2):87-97. [DOI:10.1089/fpd.2019.2676] [PMID]
5. Broz P, Ohlson MB, Monack DM. Innate immune response to Salmonella typhimurium, a model enteric pathogen. Gut Microbes. 2012;3(2):62-70. [DOI:10.4161/gmic.19141] [PMID] [PMCID]
6. Linehan SA, Holden DW. The interplay between Salmonella typhimurium and its macrophage host-what can it teach us about innate immunity? Immunol lett. 2003;85(2):183-92. [DOI:10.1016/S0165-2478(02)00227-4]
7. Bazrgari N, Garoosi GA, Dadar M. Genetic Diversity and Phylogenetic Relationship of Clinical Isolates of Brucella melitensis Based on Gene Polymorphism of β Subunit of RNA Polymerase (rpoB) Gene in Iran. Iran J Med Microbiol. 2020;14(5):425-40. [DOI:10.30699/ijmm.14.5.425]
8. Rosenberger CM, Scott MG, Gold MR, Hancock RE, Finlay BB. Salmonella typhimurium infection and lipopolysaccharide stimulation induce similar changes in macrophage gene expression. J Immunol. 2000;164(11):5894-904. [DOI:10.4049/jimmunol.164.11.5894] [PMID]
9. Khezri M, Rezaei M, Mohabbati Mobarez A. Detection of viable but non-culturable state of Escherichia coli O157: H7 using reverse transcription PCR. Iran J Med Microbiol. 2019;12(6):390-8. [DOI:10.30699/ijmm.12.6.390]
10. Monson MS, Bearson BL, Sylte MJ, Looft T, Lamont SJ, Bearson SMD. Transcriptional response of blood leukocytes from turkeys challenged with Salmonella enterica serovar Typhimurium UK1. Vet Immunol Immunopathol. 2021;232:110181. [DOI:10.1016/j.vetimm.2020.110181] [PMID]
11. Sheikh A, Charles RC, Sharmeen N, Rollins SM, Harris JB, Bhuiyan MS, et al. In vivo expression of Salmonella enterica serotype Typhi genes in the blood of patients with typhoid fever in Bangladesh. PLoS Negl Trop Dis. 2011;5(12):e1419. [DOI:10.1371/journal.pntd.0001419] [PMID] [PMCID]
12. Bardi GT, Smith MA, Hood JL. Melanoma exosomes promote mixed M1 and M2 macrophage polarization. Cytokine. 2018;105:63-72. [DOI:10.1016/j.cyto.2018.02.002] [PMID] [PMCID]
13. Atri C, Guerfali FZ, Laouini D. Role of Human Macrophage Polarization in Inflammation during Infectious Diseases. Int J Mol Sci. 2018;19(6):1801. [DOI:10.3390/ijms19061801] [PMID] [PMCID]
14. Kaur J, Jain SK. Role of antigens and virulence factors of Salmonella enterica serovar Typhi in its pathogenesis. Microbiol Res. 2012;167(4):199-210. [DOI:10.1016/j.micres.2011.08.001] [PMID]
15. Kim JE, Phan TX, Nguyen VH, Dinh-Vu HV, Zheng JH, Yun M, et al. Salmonella typhimurium Suppresses Tumor Growth via the Pro-Inflammatory Cytokine Interleukin-1beta. Theranostics. 2015;5(12):1328-42. [DOI:10.7150/thno.11432] [PMID] [PMCID]
16. Sheppe AEF, Kummari E, Walker A, Richards A, Hui WW, Lee JH, et al. PGE2 Augments Inflammasome Activation and M1 Polarization in Macrophages Infected With Salmonella Typhimurium and Yersinia enterocolitica. Front Microbiol. 2018;9:2447. [DOI:10.3389/fmicb.2018.02447] [PMID] [PMCID]
17. Hojati P. Isolation and identification of Salmonella poultry ERic-PCR and serological methods: Dissertation of Poultry Veterinary. Tehran. Science and Research Azad ….
18. Panda SK, Ravindran B. Isolation of human PBMCs. Bio-protocol. 2013;3(3):e323-e. [DOI:10.21769/BioProtoc.323]
19. Emilsson V, Thorleifsson G, Zhang B, Leonardson AS, Zink F, Zhu J, et al. Genetics of gene expression and its effect on disease. Nature. 2008;452(7186):423-8. [DOI:10.1038/nature06758] [PMID]
20. Schadt EE, Lamb J, Yang X, Zhu J, Edwards S, GuhaThakurta D, et al. An integrative genomics approach to infer causal associations between gene expression and disease. Nat Genet. 2005;37(7):710-7. [DOI:10.1038/ng1589] [PMID] [PMCID]
21. Dos Santos AMP, Ferrari RG, Conte-Junior CA. Virulence Factors in Salmonella Typhimurium: The Sagacity of a Bacterium. Curr Microbiol. 2019;76(6):762-73. [DOI:10.1007/s00284-018-1510-4] [PMID]
22. Furter M, Sellin ME, Hansson GC, Hardt WD. Mucus Architecture and Near-Surface Swimming Affect Distinct Salmonella Typhimurium Infection Patterns along the Murine Intestinal Tract. Cell Rep. 2019;27(9):2665-78 e3. [DOI:10.1016/j.celrep.2019.04.106] [PMID] [PMCID]
23. Herman R, Bennett-Ness C, Maqbool A, Afzal A, Leech A, Thomas GH. The Salmonella enterica serovar Typhimurium virulence factor STM3169 is a hexuronic acid binding protein component of a TRAP transporter. Microbiology. 2020;166(10):981. [DOI:10.1099/mic.0.000967] [PMID] [PMCID]
24. Muraille E, Leo O, Moser M. TH1/TH2 paradigm extended: macrophage polarization as an unappreciated pathogen-driven escape mechanism? Front immunol. 2014;5:603. [DOI:10.3389/fimmu.2014.00603]
25. Murray PJ, Wynn TA. Obstacles and opportunities for understanding macrophage polarization. J Leukoc Biol. 2011;89(4):557-63. [DOI:10.1189/jlb.0710409] [PMID] [PMCID]
26. Saqib U, Sarkar S, Suk K, Mohammad O, Baig MS, Savai R. Phytochemicals as modulators of M1-M2 macrophages in inflammation. Oncotarget. 2018;9(25):17937. [DOI:10.18632/oncotarget.24788] [PMID] [PMCID]
27. Orecchioni M, Ghosheh Y, Pramod AB, Ley K. Macrophage Polarization: Different Gene Signatures in M1(LPS+) vs. Classically and M2(LPS-) vs. Alternatively Activated Macrophages. Front immunol. 2019;10:1084. [DOI:10.3389/fimmu.2019.01084] [PMID] [PMCID]
28. Weyand CM, Zeisbrich M, Goronzy JJ. Metabolic signatures of T-cells and macrophages in rheumatoid arthritis. Curr Opin Immunol. 2017;46:112-20. [DOI:10.1016/j.coi.2017.04.010] [PMID] [PMCID]
29. Liu L, Guo H, Song A, Huang J, Zhang Y, Jin S, et al. Progranulin inhibits LPS-induced macrophage M1 polarization via NF-small ka, CyrillicB and MAPK pathways. BMC Immunol. 2020;21(1):32. [DOI:10.1186/s12865-020-00355-y] [PMID] [PMCID]
30. Rath M, Muller I, Kropf P, Closs EI, Munder M. Metabolism via Arginase or Nitric Oxide Synthase: Two Competing Arginine Pathways in Macrophages. Front immunol. 2014;5:532. [DOI:10.3389/fimmu.2014.00532] [PMID] [PMCID]
31. Jimenez-Garcia L, Higueras MA, Herranz S, Hernandez-Lopez M, Luque A, de Las Heras B, et al. A hispanolone-derived diterpenoid inhibits M2-Macrophage polarization in vitro via JAK/STAT and attenuates chitin induced inflammation in vivo. Biochem Pharmacol. 2018;154:373-83. [DOI:10.1016/j.bcp.2018.06.002] [PMID]
32. Qin H, Holdbrooks AT, Liu Y, Reynolds SL, Yanagisawa LL, Benveniste EN. SOCS3 deficiency promotes M1 macrophage polarization and inflammation. J Immunol. 2012;189(7):3439-48. [DOI:10.4049/jimmunol.1201168] [PMID] [PMCID]
33. Platanitis E, Decker T. Regulatory Networks Involving STATs, IRFs, and NFkappaB in Inflammation. Front immunol. 2018;9:2542. [DOI:10.3389/fimmu.2018.02542] [PMID] [PMCID]
34. Febriza A, Natzir R, Hatta M, As' ad S, Kaelan C, Kasim VN, et al. The Role of IL-6, TNF-α, and VDR in Inhibiting the Growth of Study. Open Microbiol. 2020;14(1). [DOI:10.2174/1874285802014010065]
35. Wang H, Luo H, Wan X, Fu X, Mao Q, Xiang X, et al. TNF-α/IFN-γ profile of HBV-specific CD4 T cells is associated with liver damage and viral clearance in chronic HBV infection. Journal of hepatology. 2020;72(1):45-56. [DOI:10.1016/j.jhep.2019.08.024] [PMID]
36. Hu JL, Yu H, Kulkarni RR, Sharif S, Cui SW, Xie MY, et al. Modulation of cytokine gene expression by selected Lactobacillus isolates in the ileum, caecal tonsils and spleen of Salmonella-challenged broilers. Avian Pathol. 2015;44(6):463-9. [DOI:10.1080/03079457.2015.1086725] [PMID]

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.