سال 11، شماره 4 - ( مهر - آبان 1396 )                   جلد 11 شماره 4 صفحات 56-45 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


1- گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان، ایران
2- گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان، ایران ، hasanshahi@gmail.com
چکیده:   (9075 مشاهده)

زمینه و اهداف: بیوفیلم­های میکروبی، ساختارهای ایجاد شده توسط میکروارگانیسم­ها هستند. اسفنج­های دریایی با بقاء در شرایط پیچیده و پر استرس دریایی، توانایی خاصی در مقابله با میکروارگانیسم­ها دارندکه این توانایی را با تولید برخی متابولیت­های ثانویه بدست آورده­اند.

مواد و روش ها:  در این مطالعه، اثر ضد میکروبی عصاره متانولی: دی کلرومتانی (۱:۱) سه گونه اسفنج دریایی از جنس Dysidea sp. جمع­آوری شده از خلیج فارس بر روی ۶ باکتری پاتوژن انسانی به فرم منفرد، با استفاده از روش دیسک پلیت انجام گردید. حداقل غلظت ممانعت کنندگی (MIC) و حداقل غلظت کشندگی (MBC) هر یک از عصاره­ها مشخص شد. در سطح بیوفیلم میکروبی، آزمون تخریب بیوفیلم تشکیل شده و مهار تشکیل بیوفیلم توسط هر کدام از عصاره­ها به صورت مجزا انجام پذیرفت.

یافته ها: نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد که اسفنج Dysidea sp c  بیشترین اثر مهاری را بر روی فرم منفرد باکتری های مورد مطالعه داشت. بیشترین اثر مهاری تشکیل بیوفیلم عصاره Dysidea sp.a در غلظت mg/ml ۱۲/۵ بر باکتری باسیلوس سرئوس و کمترین درصد مهار نیز در همین غلظت اما بر باکتری پسودوموناس آئروژینوزا تعیین گردید. بیشترین اثر تخریب بیوفیلم تشکیل شده عصاره Dysidea sp.c در غلظت mg/ml ۶/۲۵ و بر باکتری کلبسیلا پنومونیه بوده و همچنین کمترین این اثر در غلظت mg/ml ۱۲/۵ بر باکتری باسیلوس سرئوس تعیین گردید.

بحث: نتایج این تحقیق تایید کردند که هر کدام از گونه­های اسفنج دریایی فعالیت ضدمیکروبی متفاوتی بر علیه باکتری­های این پژوهش از خود نشان دادند که  می­تواند به دلیل تفاوت در تولید ترکیبات بیواکتیو و یا میکروارگانیسم­های همزیست با آنها باشد.

متن کامل [PDF 789 kb]   (2538 دریافت)    
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: مواد ضد میکروبی
دریافت: 1395/10/2 | پذیرش: 1396/5/2 | انتشار الکترونیک: 1396/6/21

فهرست منابع
1. Bhatnaga I, Kim S. Immense Essence of Excellence: Marine Microbial Bioactive Compounds. MDPI. 2010;2673-701.
2. Hardoim CCP, Costa R. Microbial Communities and Bioactive Compounds in Marine Sponges of the Family Irciniidae. MDPI. 2014;12:5089-122. [DOI]
3. Prem Ananda T, Bhata AW, Yogesh S, Upal Royb S, Siddharthb J, Sarmaa SP. Antimicrobial activity of marine bacteria associated with sponges from the waters off the coast of South East India. Microbiological Research. 2006;161:252-62. [DOI] [PubMed]
4. Javanbakht Yousefi S, Ghasemi FM, Amir Mozaffari N. Biological evaluation of bioactive substances produced in bacteria isolated from coastal waters of the Caspian. Iaulahijan. 2009; 3(4): 2008-5982.
5. Thomas TRA, Kavlekar DP, LokaBharathi PA. Marine Drugs from Sponge-Microbe Association. MDPI. 2010;8:1417-68. [DOI]
6. Newbold RW, Jensen PR, Fenical W, Pawlik JR. Antimicrobial activity of Caribbean sponge extracts. AME. 1999;19:279-84. [DOI]
7. Nazemi M, Pishehvarzad F, Motlebi A, Ahmadzadeh A. Investigation of antibacterial activities of sponge Axinella sinoxea’s extracts from Larak Island, Persian Gulf. JAE Hormozgan. 2012;1(4):65-54.
8. Simo˜es M, Simo˜es L, Vieira MJ. A review of current and emergent biofilm control strategies. LWT - FST. 2010;43:573-83. [DOI]
9. Torkamani S, Shokoh Saremi E. Biofilm Bacterial. Thesis Undergraduate on Food Industry. Khazar Institute of Higher Education. 2013.
10. Yoshida H, Katsuzaki H, Ohta R, Ishikawa K, Fukuda H, Fujino T, Suzuki A. Antimicrobial activity of the thiosufinates isolated from oil macerated garlic extract. JSBBA. 1999;63:591-4.
11. Androw JM. Standardized disc suceptibility testing method. JAC. 2001;25:48-57.
12. Mohajerfar T, Hosseinzadeh A, Akhondzadeh Basti A, Khanjari A, Misaghi A, Gandomi Nasrabadi H. Determination of Minimum Inhibitory Concentration (MIC) of Zataria multiflora Boiss. Essential Oil and Lysozim on L. monocytogenes. Jmp. 2012;11(4):1684-0240.
13. Baron EJ, Finegold SM. (1994) Methods for testing antimicrobial effectiveness. Baily and Scott`s Diagnostic Microbiology. (NY): Mosby Company; 1994.
14. Rosenberg M, Rosenberg E. Role of adherence in growth of Acinetobacter calcoaceticus RAG-1 to hexadecane. JB. 1981;148:51-7.
15. Cramton SE, Gerke C, Cotz F. In vitro methods to study biofilm formation. Methods Enzymology. 2001;336:239-55. [DOI]
16. Jabra-Rizk MA, Meiller TF, James CE, Shirtliff ME. Effect of Farnesol on Staphylococcus aureus biofilm formation and antimicrobial susceptibility. AA. 2006;50:1463-9. [DOI]
17. Sonak S, Bhosle NB. A simple method to assess bacterial attachment to surfaces. JB. 1995;9:31-8. [DOI]
18. Nostro A, Bisignano G, Cannatelli MA, Crisafi G, Germano MP, Alonzo V. Effects of Helichrysum italicum extract on growth and enzymatic activity of Staphylococcus aureus. IJAA. 2001;17:517-20.
19. Aneiros A, Garateix, A. Bioactive peptides from marine sources: pharmacological properties and isolation procedures. JCB. 2004;803:41-53. [DOI] [PubMed]
20. Kelman D, Kashman Y, Rosenberg E, Ilan M, Ifrach I, Loya Y. Antimicrobial activity of the reef sponge Amphimedon viridis from the Red Sea: evidence for selective toxicity. AME. 2001;24:9-16. [DOI]
21. Boopathy S, Kumar TTA, Kathiresan K. Isolation of symbiotic bacteria and bioactive proteins from the marine sponge, Callyspongia diffusa. IJB. 2009;272-5.
22. Govinden-Soulange J, Marie D, Kauroo S, Beesoo R, Ramanjooloo R. Antibacterial Properties of Marine Sponges from Mauritius Waters. TJPR. 2014;13(2):249-54. [DOI]

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.