[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: آرشیو مجله :: ارسال مقاله :: ثبت نام :: جستجو :: تماس با ما ::
:: سال 11، شماره 2 - ( خرداد - تیر 1396 ) ::
جلد 11 شماره 2 صفحات 1-8 برگشت به فهرست نسخه ها
شناسایی و بررسی سروتیپ های سالمونلا تیفی موریوم، اینفنتیس و انتریتیدیس در نمونه‌های بالینی از مراکز درمانی سطح استان کرمان
ابوالفضل مقدم1، شهرام نظریان 2، جعفر امانی3
1- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه تهران، تهران، ایران
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه امام حسین (ع)، تهران، ایران ، nazarian56@gmail.com
3- مرکز تحقیقات میکروبیولوژی کاربردی، دانشگاه علوم پزشکی بقیه ا... (عج)، تهران، ایران
چکیده:   (1161 مشاهده)

زمینه و اهداف: سالمونلوزیس یکی از بیماری‌های مهم عفونی و به‌عنوان یک بیماری مشترک در انسان و حیوانات می‌باشد که اهمیت شناخت و کنترل این‌گونه را ضروری‌تر می‌کند. ژن‌های خانه‌دار، ژن‌هایی هستند که به‌طورمعمول برای حفظ و بقای عملکرد سلول‌ها ضروری می‌باشند و می‌توانند به‌عنوان ژن‌های تشخیصی در غربالگری عوامل باکتریایی مدنظر قرار گیرند. هدف از این مطالعه بررسی ژن‌های خانه‌دار fliC sdf1, و fljB  برای غربالگری سرووارهای تیفی موریوم، انتریتیدیس و اینفنتیس سالمونلا می‌باشد.

مواد و روش کار: در یک مطالعه توصیفی از بهمن‌ماه سال 1393 تا مردادماه سال 1394، 132 نمونه از بیماران مبتلابه اسهال و استفراغ حاد مراجعه‌کننده به مراکز درمانی و بیمارستان‌های مختلف کرمان گرفته شد. نمونه‌ها برای شناسایی سالمونلا با روش‌های استاندارد سرولوژی و باکتریولوژی به آزمایشگاه میکروبیولوژی منتقل شدند. DNA سویه‌های جنس سالمونلا به روش CTAB استخراج و در آزمون PCR از پرایمرهای اختصاصی ژن‌های خانه‌دار جنس سالمونلا (invA) و سروتیپ های تیفی موریوم (fliC)، اینفنتیس (fljB) و انتریتیدیس (sdfI) استفاده گردید.

یافته‌ها: با استفاده از روش PCR حضور جنس سالمونلا با تکثیر ژن invA در 130 نمونه از 132 نمونه تأییدشده سالمونلا با روش‌های میکروبی و تست‌های بیوشیمیایی (98 درصد) تأیید گردید. همچنین نتایج نشان‌دهنده شیوع 19 درصدی سالمونلا اینفنتیس، 22 درصدی سالمونلا تیفی موریوم و 32 درصدی سالمونلا انتریتیدیس بود.

نتیجه‌گیری: نتایج حاکی از این بود که در این منطقه شیوع سالمونلا انترتیدیس نسبت به سایر سرووارها بیشتر است، اما شیوع سالمونلا تیفی موریوم و اینفنتیس همانند آمارهای جهانی در حال افزایش می‌باشند.

واژه‌های کلیدی: ژن‌های خانه‌دار، PCR، سالمونلا تیفی موریوم، سالمونلا انتریتیدیس، سالمونلا اینفنتیس
متن کامل [PDF 604 kb]   (148 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: باکتری شناسی پزشکی
فهرست منابع
1. Su LH, Chiu CH. Salmonella: clinical importance and evolution of nomenclature. Chang Gung Med J 2007; 30(3):210–9. [PubMed]
2. Soltan Dallal MM, Sharifi Yazdi M, Mirzaei N, Kalantar E. Prevalence of Salmonella spp. in Packed and Unpacked Red Meat and Chicken in South of Tehran. Jundishapur J Microbiol 2014;7(4):562–8.[in persian] [PubMed]
3. Nosrat S, Sabokbar A, Dezfoolian M, Tabarraie B, Fallah F. Prevalence of Salmonella enteritidis, typhi and typhimurium from food products in Mofid hospital. Res Med 2012;36(1):43–8. [in persian] [Article]
4. Silver N, Best S, Jiang J, Thein S. Selection of housekeeping genes for gene expression studies in human reticulocytes using real-time PCR. BMC Mol Biol 2006;7(1):33. [PubMed]
5. Miller Ma, Sentz J, Rabaa Ma, Mintz Ed. Global epidemiology of infections due to Shigella, Salmonella serotype Typhi, and enterotoxigenic Escherichia coli. Epidemiol Infect 2008;136(04): 433-5. [PubMed]
6. Gonera E. Salmonellosis in 1997. Przegl Epidemiol 1999; 53(1-2):83–91.
7. Rahn K, De Grandis SA, Clarke RC, McEwen SA, Galán JE, Ginocchio C, et al. Amplification of an invA gene sequence of Salmonella typhimurium by polymerase chain reaction as a specific method of detection of Salmonella. Mol Cell Probes 1992; 6(4):271–9. [PubMed]
8. Malorny B, Hoorfar J, Bunge C, Helmuth R. Multicenter validation of the analytical accuracy of Salmonella PCR: towards an international standard. Appl Environ Microbiol 2003; 69(1):290–6. [Article]
9. Darwin KH, Miller VL. Molecular basis of the interaction of Salmonella with the intestinal mucosa. Clin Microbiol Rev 1999; 12(3):405–28. [PubMed]
10. Oliveira SD, Santos LR, Schuch DMT, Silva AB, Salle CTP, Canal CW. Detection and identification of salmonellas from poultry-related samples by PCR. Vet Microbiol 2002; 87(1):25–35. [PubMed]
11. Agron PG, Walker RL, Kinde H, Sawyer SJ, Hayes DC, Wollard J, et al. Identification by subtractive hybridization of sequences specific for Salmonella enterica serovar enteritidis. Appl Environ Microbiol 2001; 67(11):4984–91. [PubMed]
12. Kardos G, Farkas T, Antal M, Nógrády N, Kiss I. Novel PCR assay for identification of Salmonella enterica serovar Infantis. Lett Appl Microbiol 2007; 45(4):421–5. [PubMed]
13. Eshraghi S, Soltan Dalall M, Fardsanei F, Zahraii Salehi T, Ranjbar R, Nikmanesh B. Salmonella enteritidis and antibiotic resistance patterns: A study on 1950 children with diarrhea. Tehran Univ Med J 2010; 67(12):876–82. [in persian] [Article]
14. Wang TY, Wang L, Zhang JH, Dong WH. A simplified universal genomic DNA extraction protocol suitable for PCR. Genet Mol Res 2011; 10(1):519–25. [PubMed]
15. Jamshidi A, Bassami M., Afshari-Nic S. Identification of Salmonella spp. and Salmonella typhimurium by a multiplex PCR-based assay from poultry carcasses in Mashhad- Iran. IntJVetRes 2009; 3(1):43–8. [Article]
16. Lim Y-H, Hirose K, Izumiya H, Arakawa E, Takahashi H, Terajima J, et al. Multiplex polymerase chain reaction assay for selective detection of Salmonella enterica serovar typhimurium. Jpn J Infect Dis 2003; 56(4):151–5. [PubMed]
17. de Freitas CG, Santana AP, da Silva PHC, Gonçalves VSP, Barros M de AF, Torres FAG, et al. PCR multiplex for detection of Salmonella Enteritidis, typhi and typhimurium and occurrence in poultry meat. Int J Food Microbiol 2010; 139(1-2):15–22. [PubMed]
18. Lin JS, Tsen HY. Development and use of polymerase chain reaction for the specific detection of Salmonella typhimurium in stool and food samples. J Food Prot 1999; 62(10):1103–10.
19. Adak GK. Trends in indigenous foodborne disease and deaths, England and Wales: 1992 to 2000. Gut. 2002; 51(6):832–41. [PubMed]
20. Pan TM, Liu YJ. Identification of Salmonella enteritidis isolates by polymerase chain reaction and multiplex polymerase chain reaction. J Microbiol Immunol Infect 2002; 35(3):147–51. [PubMed]
21. Jafari RA, Ghorbanpour M, Jaideri A. An Investigation into Salmonella Infection Status in Backyard Chickens in Iran. Int J Poult Sci 2007; 6(3):227–9. [in persian] [Article]
22. Mehrabyan S, Rafiee Tabatabaei R, Hajiyan A. Study of type and drug resistance in salmonella isolated from foods. J Sci 2001; 1:193–9. [in persian]
23. Jinu M, Agarwal RK, Sailo B, Wani MA, Kumar A, Dhama K, et al. Comparison of PCR and Conventional Cultural Method for Detection of Salmonella from Poultry Blood and Faeces. Asian J Anim Vet Adv 2014; 9(11):690–701. [Article]
24. Soria MC, Soria MA, Bueno DJ. Comparison of 2 culture methods and PCR assays for Salmonella detection in poultry feces. Poult Sci. 2012; 91(3):616–26. [PubMed]
25. Soltan Dallal M, Rahimi Forushani A, Sadigh Maroufi S, Sharifi Yazdi K. The comparison of PCR technique and API-20E kit with the conventional biomedical methods for the identification of Salmonella species in laboratory. mljgoums 2011; 5(2):20–7. [in persian] [Article]
26. Report of the Task Force on Zoonoses Data Collection on the Analysis of the baseline survey on the prevalence of Salmonella in broiler flocks of Gallus gallus, in the EU, 2005-2006 - Part A: Salmonella prevalence estimates. EFSA J 2007; 5(3):98.
27. Gal-Mor O, Valinsky L, Weinberger M, Guy S, Jaffe J, Schorr YI, et al. Multidrug-resistant Salmonella enterica serovar Infantis, Israel. Emerg Infect Dis 2010; 16(11):1754–7. [PubMed]
28. Ranjbar R, Sarshar M, Sadeghifard N, AWT_TAG. Characterization of Genetic Diversity among Clinical Strains of Salmonella enterica Serovar Infantis by Ribotyping Method. ZUMS J 2012; 20(81):75-84. [in persian] [Article]
29. Rahmani M, Peighambari SM, Svendsen CA, Cavaco LM, Agersø Y, Hendriksen RS. Molecular clonality and antimicrobial resistance in Salmonella enterica serovars Enteritidis and Infantis from broilers in three Northern regions of Iran. BMC Vet Res 2013; 9(1):66 [PubMed]
30. Ward MP, Alinovi CA, Couëtil LL, Wu CC. Evaluation of a PCR to detect Salmonella in fecal samples of horses admitted to a veterinary teaching hospital. J Vet Diagn Invest 2005; 17(2):118–23. [PubMed]
31. Trkov M, Majerikova I, Jerasek B, Stefanovicova A, Rijpens N, Kuchta T. Detection of Salmonella in food over 30 h using enrichment and polymerase chain reaction. Food Microbiol 1999; 16:393–9. [Article]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

کد امنیتی را در کادر بنویسید >



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Moghadam A, Nazarian S, Amani J. Identification and assessment of Salmonella typhimurium, infantis and enteritidis serotypes in clinical samples from medical centers of Kerman province. Iran J Med Microbiol. 2017; 11 (2) :1-8
URL: http://ijmm.ir/article-1-620-fa.html
مقدم ابوالفضل، نظریان شهرام، امانی جعفر. شناسایی و بررسی سروتیپ های سالمونلا تیفی موریوم، اینفنتیس و انتریتیدیس در نمونه‌های بالینی از مراکز درمانی سطح استان کرمان. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1396; 11 (2) :1-8

URL: http://ijmm.ir/article-1-620-fa.html

سال 11، شماره 2 - ( خرداد - تیر 1396 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله میکروب شناسی پزشکی ایران Iranian Journal of Medical Microbiology
Persian site map - English site map - Created in 0.056 seconds with 824 queries by yektaweb 3474