سال 16، شماره 3 - ( خرداد - تیر 1401 )                   جلد 16 شماره 3 صفحات 250-244 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Mehrabifar N, Staji H, Keywanlou M, Salimi Bejestani M, Gallehdar Kakhki E. Identification and Genotyping of Anaplasma phagocytophylum Strains with Zoonotic Potential in Dogs from Mashhad Shelters, Khorasan-Razavi Province, Iran. Iran J Med Microbiol 2022; 16 (3) :244-250
URL: http://ijmm.ir/article-1-1536-fa.html
محرابی فر نغمه، استاجی حمید، کیوانلو مرتضی، سلیمی بجستانی محمدرضا، گله دار کاخکی احسان. تشخیص و تعیین ژنوتیپ سویه های آناپلاسما فاگوسایتوفیلوم دارای اهمیت زئونوتیک در سگ های پناهگاه های مشهد، خراسان رضوی. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1401; 16 (3) :244-250

URL: http://ijmm.ir/article-1-1536-fa.html


1- گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه سمنان، سمنان، ایران
2- گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه سمنان، سمنان، ایران ، hstaji@semnan.ac.ir
3- گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه سمنان، سمنان، ایران
4- دامپزشک بخش خصوصی حیوانات خانگی، مشهد، ایران
چکیده:   (2059 مشاهده)

زمینه و اهداف:  بیماری آناپلاسموز ناشی از گونه های جنس آناپلاسما و یک بیماری مهم منتقله توسط بندپایان در مهره داران مختلف بوده و اهمیت بهداشتی فراوانی برای انسان دارد. مطالعه حاضر با هدف بررسی حضور و تعیین ژنوتیپ آناپلاسما فاگوسیتوفیلوم با استفاده از روش های بررسی میکروسکوپی، تکنیک Realtime-PCR و آنالیزهای فیلوژنتیکی در سگ‌های پناهگاه‌های مشهد در استان خراسان رضوی انجام شد.
مواد و روش کار:  برای این منظور، در سال ۲۰۲۰، تعداد ۲۵۰ نمونه خون طی معاینات معمول بهداشتی از سگ‌ها در پناهگاه‌های مختلف واقع در شهر جمع‌آوری شد. ابتدا از نمونه‌های خون، گسترش تهیه شده و با گیمسا رنگ‌آمیزی شد و زیر میکروسکوپ نوری از نظر وجود آناپلاسما بررسی شد. سپس DNA ژنومی از بخش بافی کوت نمونه‌های خون استخراج شده و با تکثیر یک قطعه توالی با اندازه ۱۴۰۰ جفت باز از  ۱۶S rRNA متعلق به جنس آناپلاسما، از نظر وجود عفونت آناپلاسما با استفاده از روش realtime-PCR بررسی شدند. در نهایت، تعیین توالی و تجزیه و تحلیل بر روی قطعات تکثیر شده برای ارزیابی فیلوژنتیک سویه ها با استفاده از نرم افزار BLAST در نمونه های مثبت انجام شد.
یافته ها:  در مجموع تعداد ۹ سگ (۳/۶۰ %) شامل ۵ ماده (۳/۴۰ %) و ۴ نر (۳/۸۸ %) از نظر عفونت آناپلاسما در تست Realtime-PCR مثبت بودند. همچنین مورولای آناپلاسما فاگوسایتوفیلوم در نوتروفیل های ۳ حیوان که در تست PCR مثبت تشخیص داده شده بودند در گسترش خون آنها شناسایی شد.
نتیجه‌گیری:  این مطالعه یافته های مهمی را در رابطه با حضور آناپلاسما فاگوسایتوفیلوم در سگ و میزان تشابه یا ناهمگونی ژنتیکی این سویه های بیماری زا تشخیص داده شده از سگ و انسان در ایران و سایر کشورها ارائه می دهد. با توجه به یافته ها، مطالعه حاضر اولین شواهد مولکولی در مورد عفونت آناپلاسما فاگوسیتوفیلوم در سگ های پناهگاه ها در منطقه را نشان می دهد.

متن کامل [PDF 490 kb]   (586 دریافت)    
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: بیماری های مشترک انسان - دام
دریافت: 1400/8/11 | پذیرش: 1400/10/29 | انتشار الکترونیک: 1400/12/29

فهرست منابع
1. Staji H, Yousefi M, Hamedani MA, Tamai IA, Khaligh SG. Genetic characterization and phylogenetic of Anaplasma capra in Persian onagers (Equus hemionus onager). Vet Microbiol. 2021 Oct 1;261:109199. [DOI:10.1016/j.vetmic.2021.109199] [PMID]
2. Rymaszewska A, Grenda S. Bacteria of the genus Anaplasma–characteristics of Anaplasma and their vectors: a review. Vet Med. 2008 Nov 1;53(11):573-84. [DOI:10.17221/1861-VETMED]
3. Qin XR, Han FJ, Luo LM, Zhao FM, Han HJ, Zhang ZT, Liu JW, Xue ZF, Liu MM, Ma DQ, Huang YT. Anaplasma species detected in Haemaphysalis longicornis tick from China. Ticks Tick Borne Dis. 2018 May 1;9(4):840-3. [DOI:10.1016/j.ttbdis.2018.03.014] [PMID]
4. Liu Z, Ma M, Wang Z, Wang J, Peng Y, Li Y, Guan G, Luo J, Yin H. Molecular survey and genetic identification of Anaplasma species in goats from central and southern China. Appl Environ Microbiol. 2012 Jan 15;78(2):464-70. [DOI:10.1128/AEM.06848-11] [PMID] [PMCID]
5. Li H, Zheng YC, Ma L, Jia N, Jiang BG, Jiang RR, Huo QB, Wang YW, Liu HB, Chu YL, Song YD. Human infection with a novel tick-borne Anaplasma species in China: a surveillance study. Lancet Infect Dis. 2015 Jun 1;15(6):663-70. [DOI:10.1016/S1473-3099(15)70051-4]
6. Chochlakis D, Ioannou I, Tselentis Y, Psaroulaki A. Human anaplasmosis and Anaplasma ovis variant. Emerg Infect Dis. 2010 Jun;16(6):1031. [DOI:10.3201/eid1606.090175] [PMID] [PMCID]
7. Truchan HK, Seidman D, Carlyon JA. Breaking in and grabbing a meal: Anaplasma phagocytophilum cellular invasion, nutrient acquisition, and promising tools for their study. Microbes Infect. 2013 Dec 1;15(14-15):1017-25. [DOI:10.1016/j.micinf.2013.10.010] [PMID] [PMCID]
8. Nicholson WL. Family Anaplasmataceae (Anaplasmosis, Ehrlichiosis, Neorickettsiosis, and Neoehrlichiosis). InPrinciples and Practice of Pediatric Infectious Diseases 2018 Jan 1 (pp. 918-923). Elsevier. [DOI:10.1016/B978-0-323-40181-4.00170-5]
9. Dyachenko V, Pantchev N, Balzer HJ, Meyersen A, Straubinger RK. First case of Anaplasma platys infection in a dog from Croatia. Parasites vectors. 2012 Dec;5(1):1-7. [DOI:10.1186/1756-3305-5-49] [PMID] [PMCID]
10. Tamura K, Nei M, Kumar S. Prospects for inferring very large phylogenies by using the neighbor-joining method. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2004 Jul 27;101(30):11030-5. [DOI:10.1073/pnas.0404206101] [PMID] [PMCID]
11. Staji H, Tamai IA, Kafi ZZ. FIRST REPORT OF Paenibacillus cineris FROM A BURMESE PYTHON (Python molurus bivittatus) WITH ORAL ABSCESS. Slov Vet Res. 2021 Apr 1;58(2). [DOI:10.26873/SVR-1096-2020]
12. Fourie JJ, Evans A, Labuschagne M, Crafford D, Madder M, Pollmeier M, Schunack B. Transmission of Anaplasma phagocytophilum (Foggie, 1949) by Ixodes ricinus (Linnaeus, 1758) ticks feeding on dogs and artificial membranes. Parasites Vectors. 2019 Dec;12(1):1-0. [DOI:10.1186/s13071-019-3396-9] [PMID] [PMCID]
13. Elhamiani Khatat S, Daminet S, Kachani M, Leutenegger CM, Duchateau L, El Amri H, Hing M, Azrib R, Sahibi H. Anaplasma spp. in dogs and owners in north-western Morocco. Parasites Vectors. 2017 Dec;10(1):1-0. [DOI:10.1186/s13071-017-2148-y] [PMID] [PMCID]
14. Park JH, Heo EJ, Choi KS, Dumler JS, Chae JS. Detection of antibodies to Anaplasma phagocytophilum and Ehrlichia chaffeensis antigens in sera of Korean patients by western immunoblotting and indirect immunofluorescence assays. Clin Vaccine Immunol. 2003 Nov;10(6):1059-64. [DOI:10.1128/CDLI.10.6.1059-1064.2003] [PMID] [PMCID]
15. Kawahara M, Rikihisa Y, Lin Q, Isogai E, Tahara K, Itagaki A, Hiramitsu Y, Tajima T. Novel genetic variants of Anaplasma phagocytophilum, Anaplasma bovis, Anaplasma centrale, and a novel Ehrlichia sp. in wild deer and ticks on two major islands in Japan. Appl Environ Microbiol. 2006 Feb;72(2):1102-9. [DOI:10.1128/AEM.72.2.1102-1109.2006] [PMID] [PMCID]
16. Ooshiro M, Zakimi S, Matsukawa Y, Katagiri Y, Inokuma H. Detection of Anaplasma bovis and Anaplasma phagocytophilum from cattle on Yonaguni Island, Okinawa, Japan. Vet Parasitol. 2008 Jul 4;154(3-4):360-4 [DOI:10.1016/j.vetpar.2008.03.028] [PMID]
17. Bashiribod H. First Molecular Detection of Anaplasma phagocytophilum in. J Med Sci. 2004 Oct;4(4):282-6. [DOI:10.3923/jms.2004.282.286]
18. Razmi GR, Dastjerdi K, Hossieni H, Naghibi A, Barati F, Aslani MR. An epidemiological study on Anaplasma infection in cattle, sheep, and goats in Mashhad Suburb, Khorasan Province, Iran. Ann N Y Acad Sci. 2006 Oct;1078(1):479-81. [DOI:10.1196/annals.1374.089] [PMID]
19. Yousefi A, Rahbari S, Shayan P, Sadeghi-dehkordi Z, Bahonar A. Molecular evidence of Anaplasma phagocytophilum: an emerging tick-borne pathogen in domesticated small ruminant of Iran; first report. Comp Clin Pathol. 2017 May;26(3):637-42. [DOI:10.1007/s00580-017-2429-z]
20. Hosseini-Vasoukolaei N, Oshaghi MA, Shayan P, Vatandoost H, Babamahmoudi F, Yaghoobi-Ershadi MR, Telmadarraiy Z, Mohtarami F. Anaplasma infection in ticks, livestock and human in Ghaemshahr, Mazandaran Province, Iran. J Arthropod Borne Dis. 2014 Dec;8(2):204.
21. Noaman V. Epidemiological study on Anaplasma phagocytophilum in cattle: molecular prevalence and risk factors assessment in different ecological zones in Iran. Prevent Vet Med. 2020 Oct 1;183:105118. [DOI:10.1016/j.prevetmed.2020.105118] [PMID]
22. Yousefi AM, Chaechi Nosrati MR, Golmohammadi A, Azami S. Molecular detection of Anaplasma phagocytophilum as a zoonotic agent in owned and stray dogs in Tehran, Iran. Arch Razi Inst. 2019 Mar 1;74(1):33-8.
23. Hamidinejat H, Bahrami S, Mosalanejad B, Pahlavan S. First molecular survey on Anaplasma phagocytophilum revealed high prevalence in rural dogs from Khuzestan Province, Iran. Iran J Parasitol. 2019 Apr;14(2):297. [DOI:10.18502/ijpa.v14i2.1142] [PMID] [PMCID]
24. Shabana II, Alhadlag NM, Zaraket H. Diagnostic tools of caprine and ovine anaplasmosis: a direct comparative study. BMC Vet Res. 2018 Dec;14(1):1-8.
25. Lew AE, Gale KR, Minchin CM, Shkap V, de Waal DT. Phylogenetic analysis of the erythrocytic Anaplasma species based on 16S rDNA and GroEL (HSP60) sequences of A. marginale, A. centrale, and A. ovis and the specific detection of A. centrale vaccine strain. Vet Microbiol. 2003 Mar 20;92(1-2):145-60. [DOI:10.1016/S0378-1135(02)00352-8]
26. Molad T, Mazuz ML, Fleiderovitz L, Fish L, Savitsky I, Krigel Y, Leibovitz B, Molloy J, Jongejan F, Shkap V. Molecular and serological detection of A. centrale-and A. marginale-infected cattle grazing within an endemic area. Vet Microbiol. 2006 Mar 10;113(1-2):55-62. [DOI:10.1016/j.vetmic.2005.10.026] [PMID]
27. Noaman V, Shayan P. Molecular detection of Anaplasma phagocytophilum in carrier cattle of Iran-first documented report. Iran J Microbiol. 2009 Jan; 1(2):37-42.
28. Lu M, Li F, Liao Y, Shen JJ, Xu JM, Chen YZ, Li JH, Holmes EC, Zhang YZ. Epidemiology and diversity of Rickettsiales bacteria in humans and animals in Jiangsu and Jiangxi provinces, China. Sci Rep. 2019 Sep 11;9(1):1-9. [DOI:10.1038/s41598-019-49059-3] [PMID] [PMCID]
29. Fukui Y, Ohkawa S, Inokuma H. First molecular detection and phylogenetic analysis of Anaplasma phagocytophilum from a clinical case of canine granulocytic anaplasmosis in Japan. Jpn J Infect Dis. 2018 Jul 31;71(4):302-5. [DOI:10.7883/yoken.JJID.2017.558] [PMID]
30. Liu Z, Ma M, Wang Z, Wang J, Peng Y, Li Y, Guan G, Luo J, Yin H. Molecular survey and genetic identification of Anaplasma species in goats from central and southern China. Appl Environ Microbiol. 2012 Jan 15;78(2):464-70. [DOI:10.1128/AEM.06848-11] [PMID] [PMCID]
31. Barbet AF, Al-Khedery B, Stuen S, Granquist EG, Felsheim RF, Munderloh UG. An emerging tick-borne disease of humans is caused by a subset of strains with conserved genome structure. Pathogens. 2013 Sep;2(3):544-55. [DOI:10.3390/pathogens2030544] [PMID] [PMCID]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله میکروب شناسی پزشکی ایران می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق   ناشر: موسسه فرنام

© 2024 CC BY-NC 4.0 | Iranian Journal of Medical Microbiology

Designed & Developed by : Yektaweb Publishr: Farname Inc.